LAPORAN PRAKTIKUM BIOKIMIA PERTANIAN
KELOMPOK III
PROGRAM STUDI
AGROTEKNOLOGI
FAKULTAS
PERTANIAN
UNIVERSITAS
TADULAKO
PALU
2014
LAPORAN PRAKTIKUM BIOKIMIA PERTANIAN
Disusun Sebagai Salah Satu Syarat untuk
Menyelesaikan
Mata Kuliah Biokimia Pertanian pada
Fakultas Pertanian
Universitas Tadulako
Disusun oleh Kelompok III
1. Ahmad E 281 13 169
2. Moh. Ridwan E 281 13 163
3. Zulfan E 281 13 152
4. Rafiat M. Aliabu E
281 13 142
5. Sarna E 281 13 147
6. Esna E 281 13 179
PROGRAM STUDI
AGROTEKNOLOGI
FAKULTAS
PERTANIAN
UNIVERSITAS
TADULAKO
PALU
2014
HALAMAN PENGESAHAN
Judul : Laporan Praktikum
Biokimia Pertanian
Kelompok : III
Nama / Stambuk : 1.
Ahmad E
281 13 169
2. Moh. Ridwan E 281 13 163
3. Zulfan E 281 13 152
4. Rafiat M. Aliabu E 281 13 142
5. Sarna E 281 13 147
6. Esna E 281 13 179
Ruang/Kelas : 03 / AGT – 03
Program Studi : Agroteknologi
Fakultas : Pertanian
Universitas : Tadulako
Palu, 9 Juni 2014
Menyetujui,
Koordinator Asisten Asisten
Anggota
Meldi Amijaya Arif
Pribawanto
E 281 10 112 E 281 10 111
Disahkan oleh,
Dosen Penanggung
Jawab
Praktikum
Mata Kuliah Biokimia Pertanian
Dr. Ir. Gatot Siswo Hutomo., MP.
NIP. 19661228 199103 1 003
KATA PENGANTAR
Puji syukur kehadirat Tuhan Yang Maha Esa yang telah memberikan kita
berbagai macam nikmat, sehingga aktifitas hidup yang kita jalani ini akan
selalu membawa keberkahan, baik dikehidupan di alam dunia ini, lebih-lebih pada
kehidupan akhirat kelak, sehingga semua cita-cita serta harapan yang ingin kita
capai menjadi lebih mudah dan penuh manfaat.
Terima kasih sebelum dan sesudah penyusun ucapkan kepada dosen-dosen
serta teman-teman sekalian yang telah membantu, baik bantuan moril maupun
material, sehingga penyusun dapat menyelesaikan penulisan praktikum yang
berjudul “Laporan Praktikum Biokimia
Pertanian”
Penyusun menyadari bahwa, dalam penulisan laporan ini masih jauh dari kesempurnaan
serta banyak kekurangan-kekurangannya, baik dari segi tata bahasa maupun dalam
hal pengkajian kepada dosen serta teman-teman sekalian. Harapan yang paling
penting dari penyusun, mudah-mudahan apa yang penyusun tulis dapat bermanfaat,
baik untuk pribadi, teman-teman, serta orang lain yang ingin mengambil hikmah
dari isi laporan ini sebagai tambahan dalam referensi yang telah ada.
Palu, 9 Juni 2014
Penyusun
UCAPAN TERIMA KASIH
Puji syukur penyusun panjatkan kehadirat Tuhan Yang Maha Esa karena
rahmat dan hidayah-Nya sehingga dapat menyelesaikan laporan yang berjudul “Laporan Praktikum Biokimia Pertanian”
Selama pelaksanaan praktikum ini, laporan banyak mendapatkan arahan,
bimbingan, serta dorongan dari berbagai pihak sehingga laporan ini dapat
terselesaikan dengan baik dan benar. Oleh karena itu, dengan kerendahan hati
penyusun ingin mengucapkan terima kasih yang sebesar-besarnya kepada bapak Dr. Ir. Gatot Siswo Hutomo., MP. Selaku
dosen penanggung jawab praktikum mata kuliah Biokimia Pertanian dan asisten Meldi Amijaya selaku asisten
Koordinator serta Arif Pribawanto
selaku asisten anggota, yang senantiasa memberikan bimbingan serta arahan
selama pelaksanaan praktikum sampai penulisan laporan.
Pada kesempatan ini penyusun menyampaikan ucapan terima kasih yang
sebesar-besarnya kepada semua pihak yang telah membantu penyelesaian laporan
ini, terutama kepada yang terhormat :
1.
Bapak
Prof. Dr. Ir. Basir Ciyo, M. Si., selaku Rektor Universitas Tadulako.
2.
Bapak Prof.
Dr. Ir. H. Alam Anshary, M.Si., selaku Dekan Fakultas Pertanian Universitas
Tadulako.
3.
Bapak Dan
Ibu Wakil Dekan, selaku wakil dekan Fakultas Pertanian Universitas
Tadulako
4. Bapak Dr.
Ir. Muhardi, M.Si., selaku Ketuan Jurusan Budidaya Pertanian Fakultas
Pertanian Universitas Tadulako.
5. Bapak Dr.
Ir. Baharudin, MP., selaku Ketua Program Studi Agroteknologi Fakultas
Pertanian Universitas Tadulako.
6. Seluruh Dosen
dan Staf Pengajaran Program Studi Agroteknologi, terima kasih atas segala
ilmu pengetahuan yang di berikan selama penyusun menempuh pendidikan.
Ucapan terima kasih teristimewa penyusun kepada kedua Orang Tua yang
tercinta atas kasih sayang, didikan dari masih anak-anak sampai saat ini dengan
ketulusan hati serta pengorbanan yang tak terbalaskan. Hanya doa dan
restunyalah yang dapat mengiringi segala kebahagiaan dan keberhasilan dalam
hidup penyusun. Kemudian kepada saudara-saudaraku serta semua keluargaku yang
telah memberikan dorongan semangat dan doanya kepada penyusun.
Akhir kata, Alhamdulillahi Rabbil Alamin semoga Allah SWT memberikan
imbalan yang setimpal atas segala kebaikan dan jasa-jasa mereka, serta tulisan
ini mendapat ridho-Nya dan bermanfaat bagi semua pihak.
Palu, 9 Juni 2014
Penyusun
DAFTAR ISI
Halaman
HALAMAN JUDUL
HALAMAN SAMPUL DALAM ......................................................................... ii...........
HALAMAN
PENGESAHAN............................................................................. iii...........
KATA
PENGANTAR......................................................................................... iv
UCAPAN
TERIMA KASIH................................................................................ v
DAFTAR
ISI ........... vii
DAFTAR
TABEL............................................................................................................... x
DAFTAR LAMPIRAN........................................................................................ xi...........
BAB I. PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang........................................................................................ 1
1.2 Tujuan dan Kegunaan Praktikum........... 2
1.2.1 Penentuan
Kadar Klorofil ........... 2
1.2.2 Respirasi........................................................................................ 2
1.2.3 Penentuan
Kadar Pati dalam Tepung............................................ 2
1.2.4 Penentuan
Kadar Asam Lemak Bebas.......................................... 3...........
1.2.5 Penentuan
Kadar Amilosa dan Amilopektin................................ 3
1.2.6 Degradasi Pati oleh Enzim Amilase.............................................. 3...........
BAB II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1
Penentuan
Kadar Klorofil....................................................................... 4...........
2.1.1 Definisi
Klorofil............................................................................ 4
2.1.2 Macam
Pigmen Daun pada Tanaman............................................ 5
2.1.2.1 Klorofil............................................................................ 5
2.1.2.2
Karoten............................................................................ 5
2.1.2.3
Antosianin........................................................................ 6
2.1.2.4
Kapsantin
(capsanthin).................................................... 6
2.1.3 Perbedaan Klorofil a dan b............................................................ 6
2.1.4 Mekanisme Penyerapan Cahaya Matahari oleh
Klorofil 7
2.1.5 Metode Penentuan Kadar
Klorofil................................................ 8
2.2
Respirasi.................................................................................................. 9...........
2.2.1 Definisi
Respirasi.......................................................................... 9
2.2.2 Respirasi
Aerob............................................................................. 9
2.2.2.1 Glikolisis.......................................................................... 9
2.2.2.2 Siklus Krebs................................................................... 10
2.2.2.3 Rantai Transpor Elektron............................................... 11
2.2.3 Respirasi
Anaerob....................................................................... 13
2.2.3.1 Fermentasi Alkohol........................................................ 13...........
2.2.3.2 Fermentasi Asam Laktat................................................ 13
2.2.4 Metode Respirasi Pada Buah Lepas Panen................................. 13...........
2.3 Penentuan Kadar Pati dalam Tepung.................................................... 14
2.3.1 Definisi Pati................................................................................ 15
2.3.1.1
Pati
Murni...................................................................... 15
2.3.1.2 Pati Ubi Kayu................................................................ 16
2.3.1.3 Pati Keladi..................................................................... 16...........
2.3.2 Hidrolisis Pati.............................................................................. 17
2.3.3 Metabolisme Pati dalam Pertumbuhan....................................... 18
2.3.4 Fermentasi Alkohol..................................................................... 18
2.3.5 Metode Penentuan Kadar Pati dalam Bahan Nabati.................. 19...........
2.4 Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas.................................................. 19
2.4.1 Minyak
dan Lemak..................................................................... 20
2.4.2 Minyak
Kelapa............................................................................ 20
2.4.3 Minyak
Sawit.............................................................................. 21
2.4.4 Tingkat Kelarutan Minyak dan Lemak 21
2.4.5 Pelarut Lemak............................................................................. 22
2.4.6 Metode Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas.......................... 22
2.5 Penentuan Kadar Amilosa dan Amilopektin......................................... 22
2.5.1 Amilosa dan Amilopektin........................................................... 22
2.5.2 Kadar Amilosa
dan Amilopektin Barbagai Jenis Tepung........... 24...........
2.5.3 Amilosa dan Amilopektin........................................................... 25
2.5.3.1 Sumber Amilosa dan Amilopektin................................. 25
2.5.3.2 Struktur Amilosa dan Amilopektin................................ 26
2.5.3.3
Sifat-Sifat
Amilosa dan Amilopektin............................ 27
2.5.3.4
Manfaat
Amilosa dan Amilopektin............................... 28
2.5.3.5
Fungsi
Amilosa dan Amilopektin di bidang Farmasi.... 28
2.5.4 Metode Penentuan Amilosa dan
Amilopektin ............................ 30
2.6 Degradasi Pati oleh Enzim Amilase 31
2.6.1 Definisi
Enzim............................................................................ 31
2.6.2 Larutan Yodium......................................................................... 31
2.6.3 Larutan Amilum (Pati) 32
2.6.4 Saliva
(air liur)............................................................................. 32
2.6.5 Amilase....................................................................................... 33
2.6.6 Metode Degradasi Pati oleh Enzim Amilase.............................. 34
BAB III. METODE PRAKTEK
3.1 Tempat
dan Waktu.................................................................................... ........... 35
3.2 Alat
dan Bahan 35...........
3.2.1
Penentuan Kadar Klorofil ........................................................ 35
3.2.2
Respirasi..................................................................................... 35...........
3.2.3
Penentuan Kadar Pati dalam Tepung........................................ 36...........
3.2.4
Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas...................................... 36...........
3.2.5
Penentuan Kadar Amilosa dan Amilopektin............................. 36...........
3.2.6
Degradasi Pati oleh Enzim Amilase........................................... 36
3.3 Cara
Kerja.............................................................................................. 37...........
3.3.1
Penentuan Kadar Klorofil....................................................... 37...........
3.3.2
Respirasi.................................................................................. 38
3.3.3
Penentuan Kadar Pati dalam Tepung...................................... 38...........
3.3.4
Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas.................................... 39...........
3.3.5
Penentuan Kadar Amilosa dan Amilopektin.......................... 39
3.3.6
Degradasi Pati oleh Enzim Amilase........................................ 40...........
BAB IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1
Penentuan
Kadar Klorofil.................................................................... 41
4.2
Respirasi............................................................................................... 42
4.3
Penentuan
Kadar Pati dalam Tepung................................................... 43
4.4
Penentuan
Kadar Asam Lemak Bebas................................................. 44...........
4.5
Penentuan
Kadar Amilosa dan Amilopektin........................................ 44...........
4.6
Degradasi
Pati oleh Enzim Amilase..................................................... 45
BAB V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1
Kesimpulan........................................................................................... 47
5.1.1
Penentuan Kadar Klorofil....................................................... 47
5.1.2
Respirasi.................................................................................. 47...........
5.1.3
Penentuan Kadar Pati dalam Tepung...................................... 48
5.1.4
Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas.................................... 48...........
5.1.5
Penentuan Kadar Amilosa dan Amilopektin........................... 49
5.1.6
Degradasi Pati oleh Enzim Amilase........................................ 49...........
5.2
Saran..................................................................................................... 50...........
DAFTAR PUSTAKA
LAMPIRAN
BIODATA PENYUSUN
DAFTAR TABEL
Nomor Halaman
1. Penentuan
Kadar Klorofil................................................................................. 41
2. Respirasi............................................................................................................ 42...........
3. Penentuan
Kadar Pati Dalam Tepung............................................................... 43
4. Penentuan
Kadar Asam Lemak Bebas.............................................................. 44
5.
Penentuan
Kadar Amilosa dan Amilopektin 44
6.
Degradasi Pati Oleh Enzim Amilase................................................................. 45
DAFTAR LAMPIRAN
Nomor Halaman
1.
Hasil
Perhitungan pada Pengukuran Kadar Klorofil ........................................ 51
2.
Hasil
Perhitungan pada Laju Respirasi 52
3.
Hasil
Perhitungan pada Penentuan Kadar Pati dalam Tepung......................... 53
4.
Hasil
Perhitungan pada Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas 54
5.
Hasil
Perhitungan pada Penentuan Kadar Amilosa dan Amilopektin .............. 54
BAB I. PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang
Biokimia adalah kimia
mahluk hidup. Biokimia merupakan ilmu mempelajari tentang molekul dan reaksi
kimia terkatalisis oleh enzim yang berlangsung dalam semua organisme. Biokimia
merupakan ilmu yang mempelajari struktur dan fungsi komponen seluler, seperti
protein, karbohidrat, lipid, asam nukleat, dan biomolekul lainnya (Mackenzie
,C.A..2010).
Biokimia merupakan
salah satu cabang ilmu kimia yang mempelajari tentang makhluk hidup. Secara
tidak langsung biokimia merupakan salah satu disiplin ilmu dari kimia organik
dan sains biologi. Biokimia mempelajari seluruh proses kimia yang berhubungan
dengan makhluk hidup. Lebih dari 40 tahun biokimia berhasil menjelaskan proses
hidup yang merupakan bahasan khusus dalam bidang ilmu botani sampai kedokteran
(Mackenzie ,C.A..2010).
Saat ini fokus utama
biokimia adalah mempelajari proses biologi yang terjadi dalam sel. Biokimia
erat kaitannya dengan biologi molekuler. Biologi molekuler yaitu studi
mekanisme molekuler dengan adanya informasi genetik yang terkode dalam DNA (Mackenzie
,C.A..2010).
Biokimia diusulkan
pertama kali oleh Corl Neuberg pada tahun 1903. Biokimia adalah sains yang
menjelaskan struktur dan fungsional makhluk hidup dalam lingkup kimia. Biokimia
mengarahkan bidang penelitiannya pada struktur, fungsi, dan interaksi biologi
pada makromolekul seperti karbohidrat, lipida (lemak), protein, asam nukleat
yang berperan dalam kehidupan (Lewis, J. 2010).
1.2 Tujuan dan Kegunaan Praktikum
1.2.1
Penentuan Kadar Klorofil
Tujuan praktikum pada
penentuan kadar klorofil adalah untuk mempelajari cara penetapan dan menentukan
kadar klorofil pada berbagai jenis daun tanaman.
Kegunaan dari praktikum
penentuan kadar klorofil adalah yakni sebagai media pembelajaran dan informasi
bagi mahasiswa dan pembaca dalam mengetahui dan menganalisa penentuan kadar
klorofil yang ada pada berbagai jenis daun tanaman.
1.2.2
Respirasi
Tujuan praktikum
pada respirasi adalah mempelajari peristiwa respirasi pada buah lepas panen.
Kegunaan dari
praktikum respirasi yaitu untuk mengetahui tumbuhan yang telah mengalami pasca
panen akan tetap mengalami proses respirasi dengan laju yang lebih tinggi
dibandingkan saat masih tertanam di pohonnya.
1.2.3
Penentuan Kadar Pati Dalam
Tepung
Tujuan praktikum
pada penentuan kadar pati dalam tepung adalah mempelajari cara penetapan kadar
pati dalam bahan nabati.
Kegunaan dari
praktikum penentuan kadar pati dalam tepung yaitu untuk mengetahui tepung atau
amilum yang mempunyai sifat membentuk warna biru jika di teteskan iodium, dan
mengetahui konsentrasi warna biru akan menggambarkan jumlah pati yang
terkandung.
1.2.4
Penentuan Kadar Asam Lemak
Bebas
Tujuan praktikum
pada penentuan kadar asam lemak bebas adalah menentukan asam lemak bebas dari
beberapa jenis lemak atau minyak.
Kegunaan
praktikum penentuan kadar asam lemak bebas yaitu untuk mengetahui kandungan
pada produk dari berbagai jenis minyak yang tidak sempurna atau hasil
penguraian enzim lipase terhadap minyak yang menghasilkan asam lemak bebas dan
gliserol.
1.2.5
Penentuan Kadar Amilisa dan
Amilopektin
Tujuan praktikum pada penentuan kadar amilosa dan
amilopektin adalah mempelajari cara penetapan amilosa dan amilopektin.
Kegunaan dari praktikum penentuan kadar amilosa dan amilopektin
yaitu untuk mengetahui kandungan amilosa dan amilopektin dalam larutan pati
yang di larutkan dengan alcohol 96%.
1.2.6
Degradasi Pati Oleh Enzim
Amilase
Tujuan praktikum
pada degradasi pati oleh enzim amilase adalah mempelajari cara degradasi pati
oleh enzim amilase.
Kegunaan dari
praktikum degradasi pati oleh enzim amylase yaitu untuk mengetahui kerja enzim
amilase yang dapat ditentukan dengan
mengukur hasil degradasi pati dan pengurangan derajat atau hilangnya kedua
warna tersebut memberikan indikasi bahwa pati tersebut telah mengalami
degradasi.
BAB II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Penentuan
Kadar Klorofil
2.1.1 Definisi
Klorofil
Klorofil diistilahkan sebagai pewarna hijau
alami yang ada pada berbagai macam tumbuhan, susunannya terdapat di dalam
kloroplas. Ada 2 jenis klorofil alami (seperti klorofil-a dan klorofil-b).
Klorofil biasanya selalu menyatu dengan pigmen lainnya yang berdasarkan dari
kelompok karotenoid. Di dalam tanaman, klorofil terdapat dalam bentuk ikatan yang kompleks
dengan molekul protein dan lemak. Warna sayur-sayuran terutama disebabkan oleh
kandungan zat warna didalamnya yang disebut pigmen dan terdiri dari klorofil,
karotenoid dan grup flavonoid yang terdiri dari antosianin, antoxantin dan
tannin (Endang P.,2010).
Klorofil adalah
senyawa ester dan larut di dalam solvent organik. Ekstraksinya dilakukan dengan
menggunakan pelarut organik polar, khususnya acetone dan alkohol. Kandungan
klorofil bersifat tidak stabil dan lebih mudah rusak bila terkena sinar ,panas,
asam dan basa. Pada prinsipnya molekul klorofil sangat besar dan terdiri dari
empat cincin pirol yang dihubungkan satu sama lainnya oleh gugus metena ( -CH=
) membentuk sebuah molekul pipih. Pada karbon ke-7 terdapat residu propionate
yang teresterifikasi dengan fitol dan rantai cabang ini bersifat larut dalam
lipid. Klorofil dalam daun yang masih hidup terikat pada protein. Dalam proses pemanasan
proteinnya terdenaturasi dan klorofil dilepaskan (Endang P.,2010).
2.1.2 Macam Pigmen
Daun Pada Tanaman
2.1.2.1 Klorofil
Klorofil adalah kelompok pigmen fotosintesis yang terdapat dalam tumbuhan, menyerap cahaya merah, biru dan ungu, serta merefleksikan
cahaya hijau yang menyebabkan tumbuhan memperoleh ciri warnanya. Terdapat dalam
kloroplas dan memanfaatkan cahaya yang diserap sebagai energi untuk
reaksi cahaya dalam proses fotosintesis. Terdapat beberapa jenis klorofil,
yaitu klorofil a, b, c, dan d. Klorofil a merupakan jenis klorofil yang paling
penting dalan fotosintesis. Klorofil ini terdapat pada semua makhluk hidup yang
dapat berfotosintesis. Klorofil a dapat menyerap cahaya maksimal dengann panjang
gelombang 665 nm. Klorofil b juga berperan dalam fotosintesis. Klorofil b
menyerap cahaya maksimal dengan panjang gelombang 649 nm
(Kaufman ,P.B. 2009).
2.1.2.2 Karoten
Istilah karotena digunakan untuk menunjuk ke
beberapa senyawa yang berhubungan yang memiliki formula C40H56.
Karotena adalah pigmen fotosintesis berwarna jingga yang penting dalam fotosintesis. Zat ini membentuk warna jingga dalam wortel dan banyak buah dan sayur lainnya. Dia
berperan dalam fotosintesis dengan menyalurkan energi cahaya yang dia serap ke klorofil (Winarno ,F. 2010).
2.1.2.3
Antosianin
Antosianin dalam bahasa Inggris : anthocyanin, dari gabungan kata Yunani : anthos "bunga", dan cyanos "biru"
adalah pigmen larut air yang secara alami terdapat pada berbagai jenis tumbuhan. Sesuai namanya, pigmen ini memberikan warna pada bunga, buah, dan daun tumbuhan hijau, dan telah banyak digunakan sebagai pewarna alami pada
berbagai produk pangan dan berbagai aplikasi lainnya (Mackenzie
,C.A..2010).
2.1.2.4 Kapsantin (capsanthin)
Kapsantin (capsanthin), pigmen xanthofil merah
yang terdapat pada cabai, tomat, pimento, dan paprika. Karoten dan xantofil
secara bersama-sama membentuk karotenoid, yaitu kelompok pigmen warna kuning,
oranye, atau merah. Karoten merupakan hidrolarbon dan xantofil merupakan
turunan karoten yang mengandung gugus hidroksil (-OH), (Lehninger, A.L.
2009).
2.1.3 Perbedaan Klorofil a dan b
Terdapat berbagai jenis klorofil, yaitu
klorofil a, b, c, dan d. Klorofil a merupakan jenis klorofil yang paling
penting dalam fotosintesis. Klorofil ini terdapat pada semua makhluk hidup yang
dapat berfotosintesis. Pada tumbuhan, terdapat dua pusat reaksi fotosintesis
yang berbeda, yakni fotosistem I dan fotosistem II. Keduanya dibedakan
berdasarkan kemampuannya dalam menyerap cahaya dengan panjang gelombang yang
berbeda (Behall, K.M., 2008).
Perbedaan
kemampuan tersebut disebabkan oleh perbedaan kombinasi anatara klorofil a dan
klorofil b. Perbedaan kombinasi anatara klorofil a dan klorofil b berpengaruh
terhadap panjang gelombang yang diterima oleh klorofil. Fotosistem I dapat
menerima cahaya dengan panjang gelombang antara 600-700 nm, sedangkan
fotosistem II dapat menrima cahaya dengan panajng gelombang antara 340-680 nm (Behall,
K.M., 2008).
2.1.4
Mekanisme Penyerapan Cahaya Matahari Oleh Klorofil
Jadi secara sederhana, unit yang mampu untuk
menangkap energi cahaya matahari, yaitu klorofil yang melepaskan elektron dan
menyerap foton disebut dengan fotosistem. Dikenal ada 2 macam fotosistem di
dalam tilakoid, yaitu : Di dalam fotosistem I, terdapat molekul klorofil yang
berada pada pusat reaksi dari fotosistem I dinamakan P700. Di sebut demikian
karena sangat baik menyerap energi cahaya dengan panjang gelombang 700 nm. Di
dalam fotosistem II, terdapat molekul klorofil yang berada pada pusat reaksi
fotosistem II dan dinamakan P680, karena sangat baik menyerap energi cahaya
dengan panjang gelombang 680 nm (Endang, P,. 2010).
Proses penyerapan
cahaya yang selanjutnya berdampak pada lepasnya elektron dari klorofil, untuk
selanjutnya di salurkan dan ditangkap oleh akseptor elektron. Proses ini
merupakan awal dari proses fotosintesis. Berdasarkan aliran elektron,
fotosistem I bersifat siklis dan fotosistem II bersifat nonsiklis. Untuk
jelasnya semua ini akan diuraikan pada tahap selanjutnya yaitu Aliran atau
siklus electron (Endang, P,. 2010).
Ketika terjadinya
proses fotosistem atau penyerapan energi cahaya, klorofil yang dapat diserap
adalah klorofil a (P700), yaitu klorofil yang mampu menyerap terutama cahaya
merah dan biru-ungu. Klorofil a berperan langsung dalam fotosintesis disebut
dengan reaksi terang (Endang, P,. 2010).
1.1.5
Metode Penentuan Kadar
Klorofil
Menurut Nontji
(2008), Metode yang dapat digunakan untuk mengukur kadar klorofil adalah dengan
menggunakan spektrofotometer, dari nilai serapan atau absorbsi yang ditunjukkan
spektrofotometer maka kita dapat menghitung kadar klorofilnya. Metode penentuan
klorofil adalah dengan teknik Spektroskopi dengan spektrofotometer UV.
Pengukuran kadar klorofil secara spektrofotometrik didasarkan pada hukum
Lamber– Beer (Sajilata MG., 2009).
Beberapa metode untuk
menghitung kadar klorofil total, klorofil a dan kolrofil b telah dirumuskan. Di
antaranya adalah Metode Arnon (1949), menggunakan palarut aceton 85 % dan
mengukur nilai absorbansi larutan klorofil pada panjang gelombang (λ) = 663 dan
645 nm. Metode Wintermans and De Mots (1965), menggunakan palarut ethanol
(ethyl alchohol) 96 % dan mengukur gelombang (λ) = 649 dan 665 nm (Sajilata
MG., 2009).
1.2
Respirasi
1.2.1
Definisi Respirasi
Respirasi dalam biologi adalah
proses mobilisasi energi yang dilakukan jasad hidup melalui pemecahan senyawa berenergi tinggi (SET) untuk digunakan dalam menjalankan fungsi hidup. Dalam pengertian
kegiatan kehidupan sehari respirasi dapat disamakan dengan pernapasan. Namun demikian, istilah
respirasi mencakup proses-proses yang juga tidak tercakup pada istilah
pernapasan. Respirasi terjadi pada semua tingkatan organisme hidup, mulai dari individu hingga
satuan terkecil, sel. Apabila pernapasan biasanya diasosiasikan dengan penggunaan oksigen sebagai
senyawa pemecah, respirasi tidak melulu melibatkan oksigen (Treybal
,R.E., 2010).
Menurut Winarno dan
Wirakartakusumah (1981), respirasi merupakan proses pernapasan dan metabolisme
dengan menggunakan O2 dalam pembakaran senyawa makromolekul seperti
karbohidrat, protein dan lemak yang akan menghasilkan CO2, air dan sejumlah energy (Winarno
,F.G.,2010).
1.2.2
Respirasi Aerob
2.2.2.1 Glikolisis
Glikolisis
adalah proses pemecahan glukosa pada tingkat sel. Pada artikel ini saya
menjelaskan tahap-tahap glikolisis yang detail setiap tahap dalam proses
biokimia yang merupakan bagian dari respirasi selular. Akan melalui sepuluh
tahap akan memberi Anda wawasan tentang bagaimana reaksi biokimia yang kompleks
dan terkoordinasi dengan baik dapat (Treybal ,R.E.,. 2010).
Glikolisis adalah rincian sistematis glukosa dan
gula lain untuk kekuatan proses respirasi selular. Ini adalah reaksi biokimia
universal yang terjadi dalam setiap organisme uniseluler atau multiseluler yang
hidup respires aerobik dan anaerobik. Ada jalur metabolik di mana proses ini
terjadi. Tahap glikolisis yang saya hadir di sini merujuk pada jalur tertentu
yang disebut Embden, Meyerhof, Parnus jalur. Proses ini adalah bagian kecil
dari siklus respirasi seluler dan metabolisme tubuh secara keseluruhan, diarahkan
untuk menciptakan ATP yang merupakan mata uang energi tubuh (Treybal
,R.E.,. 2010).
2.2.2.2 Siklus Krebs
Siklus Krebs
adalah tahapan selanjutnya dari respirasi seluler. Siklus Krebs adalah reaksi
antara asetil ko-A dengan asam oksaloasetat, yang kemudian membentuk asam
sitrat. Siklus Krebs disebut juga dengan siklus asam sitrat, karena
menggambarkan langkah pertama dari siklus tersebut, yaitu penyatuan asetil ko-A
dengan asam oksaloasetat untuk membentuk asam sitrat.
Pertama-tama, asetil ko-A hasil dari reaksi antara
dekarboksilasi oksidatif masuk ke dalam siklus dan bergabung dengan asam
oksaloasetat membentuk asam sitrat. Setelah “mengantar” asetil masuk ke dalam
siklus Krebs, ko-A memisahkan diri dari asetil dan keluar dari siklus.
Kemudian, asam sitrat mengalami pengurangan dan penambahan satu molekul air
sehingga terbentuk asam isositrat. Lalu, asam isositrat mengalami oksidasi
dengan melepas ion H+, yang kemudian mereduksi NAD+
menjadi NADH, dan melepaskan satu molekul CO2 dan membentuk asam
a-ketoglutarat (basa : asam alpha ketoglutarat)
(Weissberger ,A.,.2009).
Setelah itu, asam a-ketoglutarat kembali melepaskan
satu molekul CO2, dan teroksidasi dengan melepaskan satu ion H+
yang kembali mereduksi NAD+ menjadi NADH. Selain itu, asam
a-ketoglutarat mendapatkan tambahan satu ko-A dan membentuk suksinil ko-A.
Setelah terbentuk suksinil ko-A, molekul ko-A kembali meninggalkan siklus,
sehingga terbentuk asam suksinat. Pelepasan ko-A dan perubahan suksinil ko-A
menjadi asam suksinat menghasilkan cukup energi untuk menggabungkan satu
molekul ADP dan satu gugus fosfat anorganik menjadi satu molekul ATP (Weissberger
,A., 2009).
Kemudian, asam suksinat mengalami oksidasi dan
melepaskan dua ion H+, yang kemudian diterima oleh FAD dan membentuk
FADH2, dan terbentuklah asam fumarat. Satu molekul air kemudian
ditambahkan ke asam fumarat dan menyebabkan perubahan susunan (ikatan) substrat
pada asam fumarat, karena itu asam fumarat berubah menjadi asam malat.
Terakhir, asam malat mengalami oksidasi dan kembali melepaskan satu ion H+,
yang kemudian diterima oleh NAD+ dan membentuk NADH, dan asam
oksaloasetat kembali terbentuk. Asam oksaloasetat ini kemudian akan kembali
mengikat asetil ko-A dan kembali menjalani siklus Krebs (Weissberger
,A., 2009).
2.2.2.3 Rantai Transpor Elektron
Rantai transpor
elektron adalah tahapan terakhir dari reaksi respirasi aerob. Transpor elektron
sering disebut juga sistem rantai respirasi atau sistem oksidasi terminal.
Transpor elektron berlangsung pada krista (membran dalam) dalam mitokondria.
Molekul yang berperan penting dalam reaksi ini adalah NADH dan FADH2,
yang dihasilkan pada reaksi glikolisis, dekarboksilasi oksidatif, dan siklus
Krebs. Selain itu, molekul lain yang juga berperan adalah molekul oksigen,
koenzim Q (Ubiquinone), sitokrom b, sitokrom c, dan sitokrom a. Pertama-tama,
NADH dan FADH2 mengalami oksidasi, dan elektron berenergi tinggi
yang berasal dari reaksi oksidasi ini ditransfer ke koenzim Q (Treybal ,R.E.,2010).
Energi yang dihasilkan ketika NADH dan FADH2
melepaskan elektronnya cukup besar untuk menyatukan ADP dan fosfat anorganik
menjadi ATP. Kemudian koenzim Q dioksidasi oleh sitokrom b. Selain melepaskan
elektron, koenzim Q juga melepaskan 2 ion H+. Setelah itu sitokrom b
dioksidasi oleh sitokrom c. Energi yang dihasilkan dari proses oksidasi
sitokrom b oleh sitokrom c juga menghasilkan cukup energi untuk menyatukan ADP
dan fosfat anorganik menjadi ATP. Kemudian sitokrom c mereduksi sitokrom a, dan
ini merupakan akhir dari rantai transpor electron (Treybal ,R.E.,2010).
Sitokrom a ini kemudian akan dioksidasi oleh sebuah
atom oksigen, yang merupakan zat yang paling elektronegatif dalam rantai
tersebut, dan merupakan akseptor terakhir elektron. Setelah menerima elektron
dari sitokrom a, oksigen ini kemudian bergabung dengan ion H+ yang
dihasilkan dari oksidasi koenzim Q oleh sitokrom b membentuk air (H2O).
Oksidasi yang terakhir ini lagi-lagi menghasilkan energi yang cukup besar untuk
dapat menyatukan ADP dan gugus fosfat organik menjadi ATP. Jadi, secara
keseluruhan ada tiga tempat pada transpor elektron yang menghasilkan ATP (Treybal
,R.E.,2010).
1.2.3
Respirasi Anaerob
1.2.3.1
Fermentasi Alkohol
Fermentasi alkohol
merupakan suatu reaksi pengubahan glukosa menjadi etanol (etil alkohol) dan
karbon dioksida. Organisme yang berperan yaitu Saccharomyces cerevisiae (ragi)
untuk pembuatan tape, roti atau minuman keras
(Winarno ,F.G.,2010).
Reaksi Kimia : C6H12O6
2C2H5OH + 2CO2 +
2 ATP
1.2.3.2
Fermentasi Asam Laktat
Fermentasi asam laktat
adalah respirasi yang terjadi pada sel hewan atau manusia, ketika kebutuhan
oksigen tidak tercukupi akibat bekerja terlalu berat
Di dalam sel otot asam laktat dapat
menyebabkan gejala kram dan kelelahan. Laktat yang terakumulasi sebagai produk
limbah dapat menyebabkan otot letih dan nyeri, namun secara perlahan diangkut
oleh darah ke hati untuk diubah kembali menjadi piruvat. Glukosa dipecah
manjadi 2 molekul asam piruvat melalui glikolisis , membentuk 2 ATP dan 2 NADH
(Simeh, M. A. 2009).
1.2.4
Metode Respirasi Pada Buah
Lepas Panen
Tumbuhan melakukan respirasi
untuk menghasilkan energy guna melakukan proses fotosintesis. Tumbuhan yang
telah mengalami pasca panen akan tetap megalami proses respirasi dengan laju
yang lebih tinggi dibandingkan saat masih tertanam dipohonnya. Respirasi yang
dilakukan oleh buah akan menghasilkan panas yang sangat penting dalam
menghitung kebutuhan refrigerasi dan fentilasi selama penyimpanan. Respirasi
pada buah klimaterik dapat diketahui dengan mengukur jumlah CO2 yang
dilepaskan. CO2 diukur dengan cara mereaksikan dengan KOH, NaOH,
atau Ba (OH)2 kemudian sisa basa dititrasi dengan HCL menggunakan
indicator fenoltalin (Weissberger ,A., 2009).
1.3
Penentuan Kadar Pati Dalam Tepung
1.3.1
Definisi Pati
Pati merupakan homopolimer
glukosa dengan ikatan α-glukosidik. Pati tersusun atas jenis molekul
polisakarida, yang satu linier (amilosa) dan yang lain bercabang (amilopektin).
Pada pati alami, kedua molekul ini disatukan berdekatan dalam granula pati
mikroskopik. Granula biasanya mengandung amilosa sekitar 15-30% dari
keseluruhan granula tersebut (Makfoeld,Djarir,.2010).
Menurut Sudarmanto (1999),
pati merupakan cadangan bahan baku pada tanaman yang disimpan pada berbagai
jaringan penimbun. Pati tersimpan dalam bentuk butiran (granula) yang
kenampakan dan ukurannya beragam. Pati merupakan glukan yang terdiri dari 2
macam fraksi. Granula pati tersusun secara berlapis-lapis mengelilingi nukleus (Winarno, 2010).
Pembentukan granula pati
dikontrol untuk endogeneus. Granula pati bersifat higroskopis, mudah menyerap
air, lembab dan diikuti dengan peningkatan diameter granula. Pati tidak larut
dalam air dingin karena antar molekulnya terikat 1 dengan lainnya lewat ikatan
H (Makfoeld,Djarir,.2010).
1.3.1.1
Pati Murni
Pati murni adalah bubuk putih, tawar dan tidak berbau yang tidak larut
dalam air dingin atau alkohol. Ini terdiri dari dua jenis molekul: linear dan
spiral amilosa dan bercabang amilopektin. Tergantung pada tanaman, pati umumnya
berisi 20 25% amilosa dan 75 sampai 80% amilopektin. Glikogen, glukosa took hewan,
adalah versi lebih bercabang amilopektin (Slamet., dkk. 2010).
Pati murni berwarna putih, padat, dapat dicerna dengan baik oleh enzim
amilase, dan mengandung sedikit protein dan lemak yang merupakan bagian dari
granula. Kebanyakan tanaman menyimpan energi dalam bentuk pati, yang tersusun
atas amilosa dan amilopektin (Slamet., dkk. 2010.).
1.3.1.2
Pati Ubi Kayu
Pati
ubi/singkong dalam 100 g yang terbesar selain air (62,5 gram) yaitu karbohidrat
(34,7 gram). Kandungan calsium dan vitamin C dalam ubi ini cukup tinggi yaitu
masing-masing 33 dan 36 mg. Komponen terbesar dari karbohidrat ubi singkong
yaitu pati dan mengandung amilopektin yang mengakibatkan pasta yang terbentuk
menjadi bening dan kecil kemungkinan untuk terjadi retrogradasi. Granula dari
pati ini berukuran 4-35 µm dengan bentuk oval, kerucut dengan bagian atas
terpotong, dan seperti kettle drum. Suhu gelatinisasi pati singkong pada 62-730C (Slamet., dkk.
2010).
1.3.1.3 Pati
Keladi
Pati keladi
mengandung karbohidrat yang cukup tinggi,yaitu sekitar 80%. Selain karbohidrat,
kandungan dalam keladi adalah lemak
sekitar 4%, protein 6%, dan air 10%. Karbohidrat di dalam pati keladi terdapat
dua senyawa, yaitu amilosa dan amilopektin dengan kadar masing-masing sebesar
1% dan 99% (Munarso J. 2009).
Pati merupakan
komponen kimiawi penyusun utama keladi. Pati keladi putih berdasarkan pada
berat keringnya mengandung senyawa pati sebanyak 90%, berupa amilosa 1-2 % dan
amilopektin 88-89% (Munarso J.,2009).
1.3.2 Hidrolisis Pati
Hidrolisis merupakan reaksi pengikatan gugus hidroksil
(OH) oleh suatu senyawa. Gugus OH dapat diperoleh dari senyawa air. Hidrolisis
dapat digolongkan menjadi hidrolisis murni, hidrolisis katalis asam, hidrolisis
katalis basa, gabungan alkali dengan air dan hidrolisis dengan katalis enzim.
Sedangkan berdasarkan fase reaksi yang terjadi diklasifikasikan menjadi
hidrolisis fase cair dan hidrolisis fase uap (Maryati Sri., 2010).
Hidrolisis pati terjadi antara suatu reaktan pati
dengan reaktan air. Reaksi ini adalah orde satu karena reaktan air yang dibuat
berlebih, sehingga perubahan reaktan dapat diabaikan. Reaksi hidrolisis pati
dapat menggunakan katalisator ion H+ yang dapat diambil dari asam.
Reaksi yang terjadi pada hidrolisis pati adalah sebagai berikut: (C6H10O5)x
+ x H2O → x C6H12O6 (Maryati
Sri., 2010).
1.3.3 Metabolisme Pati Dalam Pertumbuhan
Pati merupakan suatu bentuk utama karbohidrat yang
dikonsumsi. Pati adalah polisakarida yang terbentuk dari sejumlah molekul
glukosa yang berikatan bersama dan
membentuk karbohidrat kompleks. Umumnya, pati dapat diurai oleh enzim
pencernaan dalam usus halus menjadi molekul glukosa. Glukosa kemudian diserap
ke dalam darah dan digunakan untuk menghasilkan energi untuk tubuh.
Pati dihidrolisa di dalam saluran pencernaan oleh
amilase yang disekresikan ke dalam saluran pencernaan. Cairan air liur dan
pankreas mengandung α-amilase yang mampu menghidrolisa ikatan α-(1.4)
amilopektin menghasilkan D-glukosa, sejumlah kecil maltosa dan suatu inti yang
tahan hidrolisa (limit dekstrin). Limit dekstrin tidak dihidrolisa lebih jauh
oleh
α-amilase (tidak dapat memecahkan ikatan α-(1.6). Enzim yang berperan
dalam pemecahan ikatan ini adalah α-(1.6)-glukosidase. Aktivitas gabungan
α-amilase dan α-(1.6)-glukosidase dapat menguraikan amilopektin secara sempurna
menjadi glukosa dan sejumlah kecil maltosa (Mudjisihono., 2009).
Berdasarkan kemudahannya untuk dicerna dalam saluran
pencernaan, pati dapat diklasifikasikan menjadi pati yang dapat dicerna secara
cepat atau RDS
(rapidly digestible starch), pati yang dicerna secara lambat SDS dan pati
resisten RS (resistant starch). RDS merupakan fraksi pati yang menyebabkan
terjadinya kenaikan glukosa darah setelah makanan masuk ke dalam saluran
pencernaan, sedangkan SDS adalah fraksi pati yang dicerna sempurna dalam usus halus
dengan kecepatan yang lebih lambat dibandingkan dengan RDS
(Mudjisihono., 2009).
1.3.4 Fermentasi Alkohol
Fermentasi alcohol merupakan salah satu proses katabolisme (kaatabolisme
anaerob) karena katabolisme merupakan reaksi penguraian senyawa yang komplek menjadi
senyaw yang lebih sederhana. Pada proses tersebut bekerglass I yang berisi
larutan gula (C₆H₁₂O₆) yang di fementasikan dengan ragi roti menggunakan thermometer diperoleh
suhu 30° - 32°C, kanaikan suhu tersebut dihasilkan
dari reaksi antara gula dengan ragi yang membebaskan energy dalam bentukkalor (Miller
JB, E. 2009).
Sedagkan pada bekerglass II yang berisi air kapur + PP yang semua berwarna
keruh merah muda, setelah direaksikan menjadi berwarna merah muda keruh hal ini
dikarenakan terjadinya reaksi Ca (OH) = COCaCO + OH secara terus menerus
sehingga merubah warna larutan pada bekerglass II. Pada bekerglass I dihasilkan
bau alcohol (etanol), etanol tersebut dihasilkan dari reaksi fermentasi alcohol
seperti berikut : (Miller JB, E. 2010).
C₆H₁₂O₆ → Asam piruvat→Asam laktat→Asetildehid→C₆H₅OH (etanol)
1.3.5 Metode Penentuan Kadar Pati Dalam
Bahan Nabati
Pati atau amilum adalah karbohidrat kompleks yang tidak larut dalam air,
berwujud bubuk putih, tawar dan tidak berbau. Pati merupakan bahan utama yang
dihasilkan oleh tumbuhan untuk menyimpan kelebihan glukosa (sebagai produk
fotosintesis) dalam jangka panjang. Hewan dan manusia juga menjadikan pati
sebagai sumber energi yang penting (Kearsley., 2009).
Pati tersusun dari dua macam karbohidrat, amilosa dan amilopektin, dalam
komposisi yang berbeda-beda. Amilosa memberikan sifat keras (pera) sedangkan
amilopektin menyebabkan sifat lengket. Amilosa memberikan warna ungu pekat pada
tes iodin sedangkan amilopektin tidak bereaksi (Kearsley., 2009).
Kadar pati dari suatu bahan pangan dapat diketahui dengan menggunakan
metode Luff Schoorl. Prinsip dari penetapan kadar pati dengan metode Luff
Schoorl adalah gula pereduksi (glukosa dan matosa) dapat mereduksi Cu2+
menjadi Cu+. Kemudian sisa Cu2+ yang tidak
tereduksi dititer secara iodometrik. Jumlah Cu2+ asli
ditentukan dalam suatu percobaan blanko dan dari penetapannya dapat ditentukan
jumlah gula dalam suatu bahan pangan yang dianalisis. Oleh karena itu,
dilakukan analisis kadar pati untuk mengetahui kadar pati dari suatu bahan
pangan (Kearsley., 2009).
2.4
Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas
2.4.1 Minyak dan Lemak
Minyak dan lemak terbentuk di
dalam sel tanaman melalui reaksi esterifikasi antara 1 molekul gliserol dan 3
molekul asam lemak. Gliserol dan asam lemak terbentuk dari hasil oksidasi
karbohidrat dalam proses respirasi. Lemaka atau minyak akan terurai kembali
menjadi komponen gliserol dan asam lemak melalui reaksi hidrolisa. Asam lemak
yang terurai itu di sebut sebagai asam lemak bebas (.Ketaren, S., 2009).
2.4.2 Minyak Kelapa
Minyak kelapa murni adalah minyak
kelapa yang dibuat dari bahan baku
kelapa segar, diproses dengan pemanasan terkendali atau tanpa pemanasan sama
sekali, tanpa bahan kimia. Penyulingan minyak kelapa dapat berakibat kandungan
senyawa-senyawa esensial yang dibutuhkan tubuh tetap utuh. Minyak kelapa murni
dengan kandungan utama asam laurat ini memiliki sifat antibiotik, anti bakteri
dan jamur (Simeh, M. A. 2009).
Minyak kelapa murni, atau lebih dikenal dengan Virgin Coconut Oil (VCO),
adalah modifikasi proses pembuatan minyak kelapa sehingga dihasilkan produk
dengan kadar air dan kadar asam lemak bebas yang rendah, berwarna bening,
berbau harum, serta mempunyai daya simpan yang cukup lama yaitu sekitar lebih
dari 12 bulan (Simeh, M. A. 2009).
2.4.3 Minyak Sawit
Kelapa sawit (Elaeis Guineensis
Jack) merupakan salah satu tanaman penghasil minyak nabati yang sangat penting.
Kelapa sawit juga mampu berperan menggantikan peran kelapa (Cocos Nucifera)
sebagai bahan baku/mentah bagi industry pangan maupun nonpangan (Pasaribu, N.
2009).
Minyak kelapa sawit merupakan
salah satu kebutuhan pokok masyarakat Indonesia. Minyak kelapa sawit yang baik
akan meningktkan nilai ekonomisnya dan nilai gunanya. Minyak kelapa sawit yang
baik salah satunya dipengaruhi oleh Asam Lemak Bebas (ALB),
(Pasaribu, N. 2009).
2.4.4 Tingkat Kelarutan Minyak dan Lemak
Lemak dan minyak terdapat pada
hampir semua bahan pangan dengan kandungan yang berbeda-beda. Tetapi lemak dan
minyak sering kali ditambahkan dengan sengaja ke bahan makanan dengan berbagai
tujuan. Lemak yang ditambahkan dalam bahan pangan atau dijadikan bahan pangan
membutuhkan persyaratan dan sifat-sifat tertentu. Lemak dan minyak dapat
diekstraksi dengan berbagai cara. Untuk mengekstraksi minyak dan lemak
diperlukan pelarut yang baik (Ketaren, S.., 2009).
Tiap pelarut lemak mempunyai tingkatan kelarutan
berbeda-beda pada minyak dan lemak, dan
untuk mengetahui tingkat
kelarutan itu dilakukan percobaan ini, dengan membandingkan pelarut
organik etanol, n-heksana, dan kloroform serta pelarut polar (air) (Ketaren,
S.., 2009).
2.4.5
Pelarut Lemak
Alkohol juga termasuk zat pelarut organik yang sering
digunakan untuk melarutkan lemak dalam proses analisa lemak. Fungsi penambahan
alkohol adalah untuk melarutkan lemak atau minyak dalam sampel agar dapat bereaksi dengan basa alkali. Karena
alkohol yang digunakan adalah untuk
melarutkan minyak, sehingga alkohol (etanol) yang digunakan konsentrasinya
berada di kisaran 96%, karena etanol 95 % merupakan pelarut lemak yang baik (Simeh,
M. A., 2010).
Analisa asam lemak bebas biasanya
pelarut yang digunakan dalam percobaan adalah alkohol netral. Alkohol dalam
kondisi panas akan lebih baik melarutkan sampel yang juga nonpolar. Dalam
memanaskan alkohol, dilakukan pemanas air hal ini dikarenakan titik didih
alkohol lebih rendah daripada air.
Dengan menggunakan kondesor diaman uap air akan menjadi embun kembali.
Setlah itu diberi inidkator Pp. Apabila alkohol terlalu asam maka digunakanlah
basa (Simeh, M. A., 2009).
2.4.6 Metode Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas
Asam lemak bebas banyak di kandung
pada produk minyak, hal ini merupakan sintesis pembentukan minyak yang tidak
sempurna atau hasil penguraian enzim lipase terhadap minyak yang menghasilkan
asam lemak bebas dan gliserol. Kadar asam lemak bebas di dalam minyak di hitung
berdasarkan asam lemak yang dominan di dalam minyak atau lemak. Pada minyak
kelapa umumnya mengandung asam lemak laurat hingga 55%, hal ini akan
beebeda-beda dasar perhitungan asam lemaknya (Simeh, M. A., 2009).
2.5 Penentuan Kadar Amilosa dan Amilopektin
2.5.1
Amilosa dan Amilopektin
Amilosa merupakan polisakarida,
polimer yang tersusun dari glukosa sebagai monomernya. Tiap-tiap monomer
terhubung dengan ikatan 1,6-glikosidik. Amilosa merupakan polimer tidak
bercabang yang bersama-sama dengan amilopektin menjadi komponen penyusun pati.
Dalam masakan, amilosa memberi efek “keras” atau “pera” bagi pati atau tepung (Septorini
G. 2010).
Amilosa adalah polimer linier dari α-D-glukosa yang dihubungkan dengan
ikatan 1,4-α. Dalam satu molekul amilosa terdapat 250 satuan glukosa atau
lebih. Amilosa membentuk senyawa kompleks berwarna biru dengan iodium. Warna
ini merupakan uji untuk mengidentifikasi adanya pati (Septorini G. 2010).
Amilopektin merupakan
polisakarida yang tersusun dari monomer
α-glukosa (baca: alfa glukosa).
Amilopektin merupakan molekul raksasa dan mudah ditemukan karena menjadi satu
dari dua senyawa penyusun pati, bersama dengan amilosa. Walaupun tersusun dari
monomer yang sama, amilopektin berbeda dengan amilosa, yang terlihat dari
karakteristik fisiknya. Secara struktural, amilopektin terbentuk dari rantai
glukosa yang terikat dengan ikatan 1,6-glikosidik, sama dengan amilosa. Namun
demikian, pada amilopektin terbentuk cabang-cabang (sekitar tiap 20 mata rantai
glukosa) dengan ikatan
1,4-glikosidik. Amilopektin tidak larut
dalam air. Glikogen (disebut juga ‘pati otot’) yang dipakai oleh hewan sebagai
penyimpan energi memiliki struktur mirip dengan amilopektin (Septorini
G. 2010).
Amilopektin merupakan
polisakarida yang memiliki rantai utama
α-D-glukosa yang dihubungkan oleh
ikatan 1,4'-α. Tiap molekul glukosa pada titik percabangan dihubungkan oleh
ikatan 1,6'-α. Amilopektin merupakan molekul yang mudah ditemukan karena
menjadi satu dari dua senyawa penyusun pati, bersama-sama dengan amilosa.
Walaupun tersusun dari monomer yang sama, amilopektin berbeda dengan amilosa (Septorini
G. 2010).
2.5.2 Kadar Amilosa dan Amilopektin Barbagai Jenis Tepung
Berdasarkan literatur pati pada tepung
memiliki daya cerna yang lebih rendah daripada pati murni. Daya cerna
pati tepung beras adalah 97,9%, pati sagu 97,4%, pati jagung (maizena) 95,8%,
dan tepung terigu 64,8%. Hasil yang di dapat pada praktikum lebih tinggi
daripada literatur. Hal ini disebabkan oleh beberapa kesalahan pada saat
praktikum. Kesalahan yang dapat mengganggu penilaian daya cerna ialah pembuatan
standar. Standar yang dibuat pada praktikum ini kurang akurat, karena data
absorbansi yang didapat tidak linier. Data absorbansi yang di dapat merupakan
data fluktuatif (Makfoeld,Djarir., 2010).
Berdasarkan literatur dan hasil praktikum,
tepung dengan daya cerna pati paling tinggi adalah tepung beras, sementara
tepung dengan daya cerna paling rendah adalah tepung terigu. Daya cerna pati
dipengaruhi oleh komposisi amilosa atau amilopektin. Sampai saat ini masih
terjadi perbedaan pendapat diantara ilmuwan mengenai kecepatan pencernaan pati,
hubungannya dengan kandungan amilosa-amilopektin. Sebagian besar ilmuwan
berpendapat bahwa amilosa dicerna lebih lambat dibandingkan dengan amilopektin
(Makfoeld,Djarir., 2010).
Amilosa merupakan
polimer dari gula sederhana dengan rantai lurus, tidak bercabang. Rantai yang
lurus ini menyusun ikatan amilosa yang solid sehingga tidak mudah
tergelatinasi. Oleh karena itu amilosa lebih sulit dicerna dibandingkan dengan
amilopektin yang merupakan polimer gula sederhana, bercabang dan struktur
terbuka (Makfoeld,Djarir., 2010).
Berdasarkan
karakteristik tersebut maka pangan yang mengandung amilosa tinggi memiliki
aktivitas hipoglikemik lebih tinggi diban dingkan dengan pangan yang mengandung
amilopektin tinggi. Namun sebaliknya, berdasarkan mekanisme hidrolisis
enzimatis, amilosa dapat dihidrolisis hanya dengan satu enzim yaitu α-amilase.
Sedangkan amilopektin, karena mempunyai rantai cabang, maka pertamakali yang
dihidrolisis adalah bagian luar oleh α-amilase, kemudian dilanjutkan oleh
α(1-6) glukosidase. Selain itu, berat molekul amilopektin lebih besar
dibandingkan dengan amilosa. Berdasarkan pertimbangan ini, maka amilopektin
memerlukan waktu yang lebih lama untuk dicerna dibandingkan dengan amilosa (Makfoeld,Djarir.,
2010).
2.5.3 Amilosa dan
Amilopektin
2.5.3.1 Sumber Amilosa dan Amilopektin
Beras ketan (Oryza sativa qlutinous) mengandung karbohidrat yang cukup
tinggi,yaitu sekitar 80%. Selain karbohidrat, kandungan dalam beras ketan adalah lemak sekitar 4%,
protein 6%, dan air 10%. Karbohidrat di dalam tepung ketan terdapat dua
senyawa, yaitu amilosa dan amilopektin dengan kadar sebesar 1% dan 99% (Lehninger,
A.L. 2009).
Beras dikenal sebagai
sumber hidrat yang baik dengan kandungan sekitar 70 – 80%, sehingga berfungsi
sebagai sumber tenaga. Butir beras sebagian besar terdiri atas pati, yaitu
suatu zat hidrat arang yang tersusun dari unit-unit glukosa. Pati beras
tersusun atas dua komponen, yaitu amilosa dan amilopektin. Beras (nasi) dapat dibagi
menjadi empat golongan berdasarkan kandungan amilosanya, yaitu : (1) beras
dengan kadar amilosa tinggi 25-33%; (2) beras dengan kadar amilosa menengah
20-25%; (3) beras dengan kadar amilosa rendah 9-20% dan beras dengan kadar
amilosa sangat rendah < 9% (Winarno, 2010).
Tepung terigu
memiliki kandungan pati sebesar 65-70%, protein 8-13%, lemak 0,8-1,5% serta abu
dan air masing-masing 0,3-0,6% dan 13-15,5%. Di antara komponen tersebut yang
erat kaitannya dengan sifat khas mie adalah proteinnya yaitu prolamin (gliadin)
dan glutelin (glutenin) yang digolongkan sebagai protein pembentuk gluten (Lehninger,
A.L. 2009).
Pati jagung tersusun atas 25% amilosa dan 75%
amilopektin. Amilosa mendorong proses mekar sehingga produk yang berasal dari
pati-patian beramilopektin tinggi bersifat porous, ringan, gating, dan mudah
patah (Lehninger, A.L. 2009).
Tepung tapioka yang
dibuat dari ubi kayu mempunyai banyak kegunaan, antara lain sebagai bahan
pembantu dalam berbagai industri. Dibandingkan dengan tepung jagung, kentang,
dan gandum atau terigu, komposisi zat gizi tepung tapioka cukup baik sehingga
mengurangi kerusakan tenun, juga digunakan sebagai bahan bantu pewarna
putih (Lehninger, A.L. 2009).
2.5.3.2 Struktur Amilosa dan Amilopektin
Struktur kimia amilopektin yang bercabang,
menyebabkan struktur gel yang terbentuk lebih kompak dan lebih kuat dari pada
amilosa Sifat inilah yang menyebabkan mengapa beras ketan lebih lengket dari
pada beras biasa sehingga pada pembuatan rengginang teksturnya lebih kompak.
Kandungan amilosa yang rendah pada beras ketan cenderung menghasilkan tekstur
produk akhir yang renyah, rapuh, dan mudah hancur (Kirk Othmer., 2010).
Menurut Winarno (1984) beras ketan tidak memiliki
amilosa karena hanya mengandung 1-2% sehingga termasuk golongan beras dengan
kandungan amilosa sangat rendah (< 9%). Berdasarkan pada berat kering, beras
ketan putih mengandung senyawa pati sebanyak 90%, yang terdiri dari amilosa
1-2% dan amilopektin 88-89% . Dengan demikian amilopektin merupakan
penyusun terbanyak dalam beras ketan (Kirk Othmer., 2010).
2.5.3.3
Sifat-Sifat Amilosa dan Amilopektin
Penyusun utama pati yaitu amilosa dan
amilopektin. Meskipun amilosa dan amilopektin dibentuk oleh penyusun yang sama
yaitu molekul
D-glucopyranose, namun
terdapat perbedaan sifat fungsional antara keduanya. Rantai molekul
D-glucopyranose ada yang berbentuk rantai lurus dan ada yang bercabang. Rantai
lurus pada pati disebut dengan amilosa. Molekul
D-glucopyranosa yang
berikatan membentuk rantai lurus dihubungkan oleh ikatan α1,4 glikosida (Sudarmaji.,
2009 ).
Walaupun amilosa
dikatakan sebagai rantai lurus namun bentuk amilosa sebenarnya yaitu berbentuk
heliks atau spiral. Bagian dalam heliks amilosa mengandung atom hydrogen, oleh
karena itu interior dari amilosa memiliki sifat hidrophobik sehingga dapat
menjebak senyawa asam lemak bebas, asam lemak dari gliserida, alkohol dan
iodine (Sudarmaji., 2009 ).
Sifat lain dari
amilosa jika dibandingkan dengan amilopektin yaitu sulit membentuk gel dalam
air. Hal ini dapat dilihat pada pati yang memiliki kandungan amilosa yang
tinggi contohnya jagung high amylosa, pati gandum, atau pati beras.
Dibandingkan dengan beras ketan yang memiliki sedikit sekali amilosa dapat
membentuk gel yang sangat baik dan lekat. Oleh karena itu dalam pembuatan dodol
harus menggunakan beras ketan agar dapat memperoleh tekstur yang lekat dan liat
sebagai cirri khas tekstur pada dodol (Sudarmaji., 2009).
2.5.3.4 Manfaat
Amilosa dan Amilopektin
Pati digunakan sebagai bahan yang
digunakan untuk memekatkan makanan cair seperti sup dan sebagainya. Dalam industri,
pati dipakai sebagai komponen perekat, campuran kertas dan tekstil, dan pada
industri kosmetika. Diatas disebutkan bahwa amilum sering dicampuradukan dengan
kanji. Biasanya kanji dijual dalam bentuk tepung serbuk berwarna putih yang
dibuat dari ubi kayu sebelum dicampurkan dengan air hangat untuk digunakan (Septorini
G. 2010).
Kanji juga digunakan sebagai pengeras pakaian dengan menyemburkan larutan
kanji cair ke atas pakaian sebelum disetrika. Kanji juga digunakan sebagai
bahan perekat atau lem. Selain itu,
serbuk kanji juga digunakan sebagai penyerap kelembapan, sebagai contoh, serbuk
kanji disapukan pada bagian kelangkang bayi untuk mengurangi gatal-gatal. Kanji
lebih efektif dibandingkan bedak bayi karena kanji menyerap kelembapan dan
menjaga agar pelapis senantiasa kering. Tes kanji dilakukan untuk mengetes
adanya iodin (Septorini
G. 2010).
2.5.3.5 Fungsi
Amilosa dan Amilopektin Di Bidang Farmasi
Pada bidang farmasi, amilum terdiri
dari granul-granul yang diisolasi dari Zea
mays Linne (Graminae), Triticum
aesticum Linne (Graminae), dan Solanum
tuberosum Linne (Solanaceae). Granul amilum singkong berbentu polygonal,
membulat atau sferoidal dam mempunyai garis tengah 35 mm. Amilum gandum dan
kentang mempunyai komposisi yang kurang seragam, masing-masing mempunyai 2 tipe
granul yang berbeda (P. Colonna., 2009).
Amilum digunakan sebagai bahan penyusun dalam serbuk awur dan sebagai bahan
pembantu dalam pembuatan sediaan farmasi yang meliputi bahan pengisi tablet,
bahan pengikat, dan bahan penghancur. Sementara suspensi amilum dapat diberikan
secara oral sebagai antidotum terhadap keracunan iodium dam amilum gliserin
biasa digunakan sebagai emolien dan sebagai basis untuk supositoria . Sebagai
amilum normal, penggunaanya terbatas dalam industri farmasi. Hal ini disebabkan
karakteristiknya yang tidak mendukung seperti daya alir yang kurang baik, tidak
mempunyai sifat pengikat sehingga hanya digunakan sebagai pengisi tablet bagi
bahan obat yang mempunyai daya alir baik atau sebagai musilago, bahan pengikat
dalam pembuatan tablet cara granulasi basah (P. Colonna., 2009).
Amilum hidroksi-etil adalah bahan
yang semisintetik yang digunakan sebagai pengencer plasma (dalam larutan 6%).
Ini merupakan pengibatan tasmbahan untuk kejutan yang disebabkan oleh
pendarahan, luka terbakar, pembedahan, sepsis, dan trauma lain. Sediaan amilum
yang terdapat dalam pasaran adalah Volex. Fungsi amilum dalam dunia farmasi
tergolongi banyak dan penting. Bahkan sudah ada sediaan yang dipasarkan.
Sebaiknya dapat dimaksimalkan penggunaannya dan dilestarikan pula
tanaman-tanaman yang mengandung amilum untuk kelancaran dalam bidang farmasi (P.
Colonna., 2009).
2.5.4 Metode Penentuan Amilosa dan Amilopektin
Peranan perbandingan kadar amilosa dan amilopektin banyak terlihat pada
produk serealia. Pada uji kadar amilosa ini, tepung yang digunakan adalah
tepung beras, tepung maizena, tepung tapioka, tepung terigu, dan tepung ketan.
Pengujian kadar amilosa di awali dengan penentuan kurva standar, dimana hasil
regresi linier yang diperoleh adalah y = - 0,0028 + 0,12x. Nilai tersebut
selanjutnya digunakan untuk menentukan kadar amilosa dari tiap sampel (Munarso
J., 2010).
Pada tepung ketan, kadar amilosa
yang diperoleh adalah 26, (17,3%) dengan rata-rata 22,13%. Hasil ini
menunjukkan nilai yang terlalu tinggi karena menurut Juliano (1972) dalam beras
ketan putih berdasarkan pada berat keringnya mengandung senyawa pati sebanyak
90 %, berupa amilosa (1-2 %) dan amilopektin (88-89%), karbohidrat di dalam
tepung ketan terdiri dari amilosa sebesar 1% dan amilopektin sebesar 99% (Munarso
J., 2010).
Pada tepung beras, kandungan
amilosa dari hasil praktikum adalah 40, (24, 63%) dengan rata-rata (32,61%), sedangkan menurut Winarno 1992 amilosa tertinggi
pada beras, adalah sekitar (25-33%). Sehingga dengan demikian kandungan amilosa
pada tepung beras hasil percobaan, tergolong sangat tinggi. Hal ini dapat
terlihat dari uji pengamatan kelengketan pada saat tepung beras tersebut
setelah diberi air. Tepung beras yang digunakan ternyata sangat lengket.
Kandungan amilosa pada tepung
terigu dari hasil praktikum adalah sebesar (19,13- 52,3%) dengan rata- rata (35,72%). Sedangkan kandungan patinya menurut Kent 1967
adalah sebesar 65-70%. Dengan demikian kandungan amilopektin adalah sekitar
33,64% (Munarso J.,2010).
2.6 Degradasi Pati
Oleh Enzim Amilase
2.6.1 Definisi Enzim
Enzim adalah biomolekul berupa
protein yang berfungsi sebagai katalis (senyawa yang mempercepat proses reaksi
tanpa habis bereaksi) dalam suatu reaksi kimia organik. Molekul awal yang
disebut substrat akan dipercepat perubahannya menjadi molekul lain yang disebut
produk. Jenis produk yang akan dihasilkan bergantung pada suatu kondisi/zat,
yang disebut promoter. Semua proses biologis sel memerlukan enzim agar dapat
berlangsung dengan cukup cepat dalam suatu arah lintasan metabolisme yang
ditentukan oleh hormon sebagai promoter (Mercier, C.,2010).
2.6.2 Larutan Yodium
Yodium (bahasa Yunani: Iodes -
ungu), adalah unsur kimia pada tabel periodik yang memiliki simbol I dan nomor
atom 53. Unsur ini diperlukan oleh hampir semua mahkluk hidup. Yodium adalah
halogen yang reaktivitasnya paling rendah dan paling bersifat elektropositif.
Sebagai catatan, seharusnya astatin lebih rendah reaktivitasnya dan lebih
elektropositif dari pada yodium, tapi kelangkaan astatin membuat sulit untuk
mengkonfirmasikan hal ini (L. Bramall., 2010).
Yodium terutama digunakan dalam
medis, fotografi, dan sebagai pewarna. Seperti halnya semua unsur halogen lain,
yodium ditemukan dalam bentuk molekul diatomik. Fungsi larutan iodium
dalam uji nutrisi adalah untuk mengetahui apakah suatu bahan makanan mengandung
amilum (karbohidrat) atau zat
pati
(L. Bramall., 2010).
2.6.3 Larutan Amilum
Amilum merupakan sumber energi utama
bagi orang dewasa di seluruh penduduk dunia, terutama di negara seclang
berkembang oleh karena di konsumsi sebagai bahan makanan pokok. Disamping bahan
pangan kaya akan amilum juga mengandung protein, vitamin, serat dan beberapa
zat gizi penting lainnya. Amilum mrupakan karbohidrat dlm bentuk simpanan bagi
tumbuh-tumbuhan dlm bentuk granul yang dijumpai pada umbi & akarnya (Makfoeld,
Djarir., 2010).
Menurut sumber umbi-umbian,serealia
dan biji-bijian merupakan sumber amilum yang berlimpah ruah oleh karena mudah
didapat untuk di konsumsi. Jagung, beras dan gandum kandungan amilurnnya lebih
dari 70%, sedangkan pada kacang-kacangan sekitar 40%. Amilum (Pati) tersusun
dari dua macam karbohidrat, amilosa dan amilopektin dalam komposisi yang
berbeda-beda yaitu 10-20% amilosa dan 80-90% amilopektin (Makfoeld,
Djarir., 2010).
2.6.4 Saliva (air liur)
Saliva adalah cairan kental yang diproduksi oleh kelenjar ludah.
Kelenjar ludah tersebut terletak di bawah lidah, daerah otot pipi dan di daerah
dekat langit. Saliva mengandung 99,5% air dan 0.5% bermacam-macam yaitu ada zat
seperti kalsium (zat kapur), fosfor, natrium, magnesium dan lain-lain. Mucyn
adalah bahan yang dapat menyebabkan sifat air menjadi kental dan licin
(Maryati Sri., 2010).
Sedangkan amylase adalah enzim
yang dapat memecah zat tepung menjadi zat tepung lainnya yang lebih halus
dengan tujuan mencernanya, sehingga nantinya dapat diserap oleh didnding usus
halus. Enzim adalah bahan yang dapat
atau memang bertugas untuk mempercepat suatu reaksi bahan seperti halnya
memecah bahan lain, tetapi kandungan dan sifat dari enzim itu sendiri tidak
berubah dari aslinya (Maryati
Sri., 2010).
2.6.5 Amilase
Amilase (alfa, beta dan
glukoamilase) merupakan enzim yang penting dalam bidang pangan dan
bioteknologi. Amilase dapat diperoleh dari berbagai sumber seperti tanaman,
binatang dan mikroorganisme. saat ini sejumlah enzim amilae telah diproduksi
secara komersial. Penggunaan mikrobia dianggap lebih prosepektif karena mudah
tumbuh, cepat menghasilkan dan kondisi lingkungan dapat dikendalikan (Miller
JB, E. 2010),
Produksi enzim amilase dapat menggunakan berbagai sumber karbon.
Contoh-contoh sumber karbon yang murah adalah sekam, molase, tepung jagung,
jagung, limbah tapioka dan sebagainya. Jika digunakan limbah sebagai substrat,
maka limbah tadi dapat diperkaya nutrisinya untuk mengoptimalkan produksi
enzim. Sumber karbon yang dapat digunakan sebagai suplemen antara laian: pati,
sukrosa, laktosa, maltosa, dekstyrosa, fruktosa, dan glukosa. Sumber nitrogen
sebagai suplemen antara lain: pepton, tripton, ekstrak daging, ekstrak khamir,
amonium sulfat, tepung kedelai, urea dan natrium nitrat (Miller JB,
E. 2009).
2.6.6 Metode Degradasi
Pati Oleh Enzim Amilase
Enzim α-amilase relative mudah
diperoleh sehingga merupakan salah satu pertimbangan untuk digunakan dalam
percobaan. Enzim ini, terdapat dalam tanaman, jaringan mamalia dan mikroba.
Enzim α-amilase murni diperoleh
dari berbagai sumber misalnya dari malt (Barley), air luda manusia (saliva) dan
pangkreas (Sajilata MG., 2010).
Enzim α-amilase yang terkandung
dalam saliva dapat menghidrolisis ikatan alfa-1 antar unit D-glukosa pada
karbohidrat golongan polisakarida dalam hal ini pati (amilosa dan
amilopektin).Aktivitas enzim α-amilase dapat ditentukan
dengan mengukur hasil degradasi pati. Pari yang mengandung amilosa memberikan
warna biru ungu dengan iodin, sedangkan yang mengandung amilopektin akan
menghasilkan warna coklat. Pengurangan derajat atau hilangnya kedua warna
tersebut memberikan indikasi bahwa pati tersebut telah mengalami degradasi (Sajilata
MG., 2010).
BAB III. METODE PRAKTEK
3.1 Tempat
dan Waktu
Pelaksanaan Praktikum Mata Kuliah Biokimia Pertanian yaitu di
Laboratorium Agroindustri, Fakultas Pertanian,
Universitas Tadulako, Palu. Praktikum ini berlangsung setiap hari Kamis pukul
13.30 – 17.00 WITA, mulai
dari tanggal 8 s/d 22 Mei 2014.
3.2 Alat dan Bahan
3.2.1
Penentuan Kadar Klorofil
Alat yang digunakan pada praktikum penentuan kadar
klorofil adalah sebagai berikut :
Mortar/lumpang porselin, neraca analitik, labu ukur 25 ml, gelas ukur 25 ml,
gelas kimia 50 ml, pipet tetes dan cutter. Sedangkan bahan yang digunakan
adalah : Daun tanaman jagung, daun tanaman coklat, alkohol 95%, aquades dan
kertas saring.
3.2.2 Respirasi
Alat yang digunakan pada praktikum respirasi pada buah
lepas panen adalah sebagai berikut : Timbangan/neraca analitik,
aerator/respirator, gelas kimia 50 ml, buret, klem buret statif, erlemeyer,
pipet volume dan pipet tetes. sedangkan bahan yang digunakan adalah : Buah pisang,
buah mangga, naoh 0,5 n, naoh 0,05 n, hcl 0,05 n dan indikator fenoltalin 1%.
3.2.3 Penentuan Kadar
Pati Dalam Tepung
Alat yang digunakan
pada praktikum penentuan kadar pati dalam tepung adalah sebagai berikut :
Timbangan/neraca analitik, gelas kimia 50 ml, hot plate, labu ukur 100 ml dan
10 ml, magnetik stirrer dan spektrofotometer. Sedangkan bahan yang digunakan
adalah : Pati ubi, pati keladi, larutan iodium, dan aquades.
3.2.4 Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas
Alat yang digunakan
pada praktikum penentuan kadar asam lemak bebas adalah sebagai berikut : Biuret
25 ml, erlenmeyer 250 ml, pipet tetes, gelas ukur, penangas air dan magnetik
stirrer. Sedangkan bahan yang digunakan adalah : Minyak kelapa, NaOH 0,1 N, alkohol
95%, dan indikator phenolptalin
3.2.5 Penentuan Kadar Amilosa dan Amilopektin
Alat yang digunakan pada praktikum penentuan
kadar amilosa dan amilopektin adalah sebagai berikut : Timbangan/neraca, gelas
kimia 250 ml, corong, labu ukur 100 ml, magnetik stirrer, hot plate dan oven.
Sedangkan bahan yang digunakan adalah : Pati ubi, aquades, alkohol 96% dan kertas
saring.
3.2.6 Degradasi Pati Oleh Enzim Amilase
Alat yang digunakan pada praktikum
degradasi pati oleh enzim amylase adalah sebagai berikut : Tabung reaksi, rak
tabung, gelas kimia 25 ml, gelas ukur 10 ml dan pipet tetes. Sedangkan bahan
yang digunakan adalah : Larutan pati, iodium dan enzim α-amilase.
3.3 Cara Kerja
3.3.1
Penentuan Kadar Klorofil
Siapkan daun tanaman yang telah
berfotosintesis (terkena sinar matahari). Potong-potong kecil dan hilangkan
tulangnya. Gerus potongan-potongan daun tersebut dalam lumpang sampai halus,
timbang daun yang telah digerus sebanyak 1 gram, kemudian masukan ke dalam
beaker glass, lalu tambahkan alcohol 95% sebanyak 25 ml. Saring dengan kertas
saring dan ambil filtratnya.
Kemudian masukan ke dalam labu ukur 25 ml, dan tepatkan sampai tanda
tera. Kemudian ukur absorbansinya dengan menggunakan spektrofotometer pada
panjang gelombang 649 nm dan 665 nm. Catat masing-masing nilai absorbansinya
(Optical Density). Tentukan konsentrasi klorofil pada
masing-masing
daun dengan rumus dari Winterman dan De Mots sebagai berikut :
Klorofil A = 13,7 x OD 665 nm – 5,76 x OD 649 nm (mg/l)
Klorofil B = 25,8 x OD 649 nm – 7,7 x OD 665 nm (mg/l)
Klorofil Total = 20,0 x OD 649 nm - 6,1 x OD 665 nm (mg/l)
3.3.2
Respirasi
Siapakan larutan pereaksi dan alat
aerator, erlemeyer, wadah/toples berisi buah atau bahan yang akan diuji.
Hubungkan aerator dengan erlemeyer yang berisi 50 ml, NaOH 0,5 N dengan
wadah/toples berisi buah dan hubungkan lagi dengan erlemeyer berisi 50 ml, NaOH
0,05 N. Nyalakan aerator biarkan respirasi berlangsung 3 jam, kemudian ambil
isi erlemeyer NaOH 0,05 N.
Erlemeyer yang berisi NaOH
ditambahkan 3 tetes indicator fenoltalin, kemudian titrasi dengan HCL 0,05 N
sampai terjadi perubahan warna larutan. Lakukan hal yang sama pada blanko dan
tentukan laju respirasi buah yang diuji dengan rumus :
Laju Respirasi (mg CO2/kg/jam) =
(ml titrasi blanko – ml titrasi contoh) x
N HCL x BM CO2
3.3.3
Penentuan Kadar Pati Dalam Tepung
Timbang dengan tepat 1 gram sampel tepung
pati, kemudian masukkan ke dalam gelas kimia 100 ml. Tambahkan 100 ml air
aquades, panaskan dengan menggunakan hot plate sampai terbentuk gel, kemudian
dinginkan. Selanjutnya tambahkan larutan iodium sebanyak 3 tetes lalu aduk
merata. Ukur absorbansinya dengan panjang gelombang 750 nm dengan pengenceran 20
kali. Catat nilai absorbansi (ABS) yang diperoleh. Pengukuran sampel tepung
pati ubi dengan pengenceran 100 kali dan hitung kadar pati dengan rumus :
Kurva = Y x Sampel Pati + X =…….
20 x…….=……….mg/ml
Kp = ……../1000 x 100%
=……..%
3.3.4 Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas
Timbang 2 gram minyak masukkan ke dalam
erlemeyer lalu tambahkan 25 ml alcohol 95%. Panaskan diatas penganas air selama
10 menit. Setelah itu tambahkan 2 tetes indicator phenolptalin. Titrasi dengan
larutan NaOH 0,1 N hingga terjadi perubahan warna. Catat volume titrasinya lalu
hitung kadar asam lemak bebasnya dengan rumus :
X ml BM Asam Lemak x 0,1 N
Kadar Asam Lemak
Bebas = x 100 %
2 gram
Catatan :
BM minyak kelapa (asam laurat) =
200
BM minyak sawit (asam palmitat) =
256
3.3.5 Penentuan Kadar Amilosa dan Amilopektin
Siapkan kertas saring dan masukkan
di oven selama 10 menit, masukkan ke dalam desikator selama 15 menit lalu
timbang kertas sering dan catat beratnya (A). Timbang pati ubi ± 5 gram dalam kondisi
kering, larutkan pati tersebut ke dalam 100 ml alcohol 96% dan aduk selama 30
menit. Saring pati tersebut dengan menggunakan kertas saring yang telas
diketahui beratnya. Kemudian keringkan dalam oven dengan suhu 600C
selama 10 menit, setelah kering kertas saring + pati ditimbang kembali (B).
Rumus yang digunakan :
(A + C (5 gram) ) – B
Kadar Amilosa = x 100 %
5 gram
3.3.6
Degradasi Pati Oleh Enzim Amilase
Siapkan 4 tabung reaksi yang
berkode A, B, C dan D masing-masing diisi dengan larutan pati 2 ml dan 1 tetes
iodium. Kemudian keluarkan dari mulut enzim α-Amilase yang ditampung pada gelas kimia. Pada
tabung A tidak ditambahkan enzim, tabung B ditambahkan 0,5 ml enzim, tabung C
ditambahkan 1,0 ml enzim dan pada tabung D ditambahkan 1,5 ml enzim. Kemudian
amati perubahan warna yang terjadi pada masing-masing tabung, terutama
perubahan warna biru yang semakin menghilang.
BAB IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Penentuan
Kadar Klorofil
Tabel 1. Hasil Analisis Kimia
Pengamatan Penentuan Kadar Klorofil :
No
|
Jenis Daun
|
Absorbansi
|
Konsebtrasi Klorofil nm (mg/l)
|
|||
λ=665
nm
|
λ=649
nm
|
a
|
b
|
total
|
||
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
|
Daun A Muda
Daun B Muda
Daun C Muda
Daun D Muda
Daun E Tua
Daun F Tua
Daun G Tua
Daun H Tua
|
1,5823
2,6020
2,8345
1,8292
2,8531
2,8923
2,8531
2,5330
|
0,8259
1,5409
2,4514
0,9482
2,3062
2,8531
2,6020
1,4897
|
12,5634
26,7718
24,7125
19,6043
22,8037
23,1906
24,0999
26,1214
|
9,1245
19,7198
41,4204
10,3787
37,5310
51,3392
45,1627
18,9301
|
6,866
14,946
31,737
7,806
28,721
39,420
34,637
14,343
|
Sumber : Lab. Analisis Teknologi
Hasil Pertanian Faperta Untad (2014).
Berdasarkan hasil praktikum Biokimia terhadap Penentuan Kadar Klorofil di
Laboratorium Agroindustri yang disajikan pada tabel 1 menunjukan bahwa, pada
daun muda dari berbagai jenis tanaman, kadar klorofi total yang di hasilkan
adalah lebih rendah di bandingkan dengan kadar klorofil total pada daun tanaman
yang tua. Hal ini dapat diketahui komponen utama pada daun hijau adalah
klorofil A dan B. Dimana klorofil mempunyai sifat yang mudah larut dalam
pelarut organic polar. Dalam proses fotosintesis klorofil sangat penting karena
memiliki pigmen yang menangkap cahaya (energy), dengan kadar klorofil dan
karatenoid yang tinggi.
4.2 Respirasi
Tabel 2. Hasil
Analisis Kimia Pengamatan Respirasi Pada Buah Lepas Panen :
No
|
Jenis
Buah
|
ml titrasi
blanko
|
ml titrasi
contoh
|
N
HCl
|
BM
CO2
|
Laju Respirasi
(mg CO2/kg/jam)
|
1.
2.
|
Mangga
Pisang
|
34,25 ml
34,25 ml
|
26,20 ml
31, 80 ml
|
0,05
0,05
|
44
44
|
17,71
5,39
|
Sumber : Lab.
Analisis Teknologi Hasil Pertanian Faperta Untad (2014).
Berdasarkan hasil praktikum Biokimia terhadap Pengamatan Respirasi Pada
Buah Lepas Panen di Laboratorium Agroindustri yang disajikan pada tabel 2
menunjukan bahwa, dari dua jenis buah memiliki laju respirasi yang berbeda.
Pada buah manga dengan hasil titrasi 26,2 ml menghasilkan laju respirasi 17,71
mg CO2/kg/jam. Sedangkan pada buah pisang 5,39 mg CO2/kg/jam.
Hal ini dapat diketahui bahwa tumbuhan yang telah mengalami pasca panen
akan tetap mengalami proses respirasi dengan laju yang lebih tinggi
dibandingkan saat masih tertanam dipohonya. Respirasi yang dilakukan oleh buah
akan menghasilkan panas yang mana sangat penting dalam menghitung kebutuhan
refrigerasi dan ventilasi selama penyimpanan.
.
4.3 Penentuan Kadar Pati Dalam Tepung
Tabel 3. Hasil
Analisis Kimia Pengamatan Penentuan Kadar Pati Standar :
No
|
Sampel
|
Pengenceran
|
Panjang
Gelombang
|
Absorbansi
|
Hasil Persamaan
Kurva
|
|
x
|
y
|
|||||
1.
|
Pati Murni
|
10 kali
20 kali
30 kali
40 kali
|
λ =
750 nm
|
0,0147
0,0128
0,0071
0,0052
|
0,016
|
0,003
|
Sumber : Lab.
Analisis Teknologi Hasil Pertanian Faperta Untad (2014).
Tabel 3. Hasil
Analisis Kimia Pengamatan Penentuan Kadar Pati Dalam Tepung :
No
|
Sampel
|
Pengenceran
|
Panjang
Gelombang
|
Absorbansi
|
Konsentrasi
Pati
(mg/ml)
|
1.
2.
|
Pati Keladi
Pati Ubi
|
20 kali
20 kali
|
λ =
750 nm
λ =
750 nm
|
0,1741
0,0723
|
0,033%
0,0324%
|
Sumber : Lab.
Analisis Teknologi Hasil Pertanian Faperta Untad (2014).
Berdasarkan hasil praktikum Biokimia terhadap Pengamatan Penentuan Kadar
Pati Standar dan Kadar Pati Dalam Tepung di Laboratorium Agroindustri yang
disajikan pada tabel 3 menunjukan bahwa, pada pati keladi dengan pengenceran 20
kali menghasilkan kadar pati 0,033%, pada gelombang 750 nm dan hasil persamaan
kurva dari pati murni. Sedangkan pada pati ubi menghasilkan 0,0324%.Dari kedua
pati tersebut dapat memberikan perbandingan bahwa dalam tepung biasanya juga
mengandung serat dan mineral yang umumnya sangat rendah, dalam hal ini kadar
serat dan abu diabaikan jadi kadar dalam tepung terdiri dari kelompok amilosa
dan amilopektin atau merupakan kadar pati total.
4.4 Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas
Tabel 4. Hasil
Analisis Kimia Pengamatan Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas :
No
|
Jenis
Minyak
|
Berat
Bahan
|
Hasil
Titrasi
|
BM
Asam Lemak
|
Kadar
Asam Lemak Bebas (%)
|
1.
2.
|
Kelapa
Sawit
|
2 gram
2 gram
|
16,00 ml
12,00 ml
|
200
256
|
160%
153,6%
|
Sumber : Lab.
Analisis Teknologi Hasil Pertanian Faperta Untad (2014).
Berdasarkan hasil
praktikum Biokimia terhadap Pengamatan Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas di
Laboratorium Agroindustri yang disajikan pada tabel 4 menunjukan bahwa, hasil
titrasi dari berbagai jenis minyak yang di amati pada minyak kelapa 16,00 ml
dan minyak sawit 12,00 ml. Sedangkan kadar asam lemak bebas pada minyak kelapa
adalah 160% dan minyak sawit 153,6%.
Dari kedua jenis minyak
tersebut merupakan sintesis pembentukan minyak yang tidak sempurna atau hasil
penguraian enzim lipase terhadap minyak yang menghasilkan asam lemak bebas dan
gliserol. Asam lemak bebas pada suatu minyak tergantung pada kandungan asam
lemak yang dominan.
4.5 Penentuan Kadar Amilosa dan Amilopektin
Tabel 5. Hasil Analisis Kimia Pengamatan Penentuan
Kadar Amilosa dan Amilopektin :
No
|
Jenis
Pati
|
Berat
Kertas
Saring
|
Berat
Kertas
Saring + Pati
|
Berat
Bahan
|
Kadar
Amilosa
(%)
|
1.
2.
|
Keladi
Ubi
|
1,0524 gram
1,0720 gram
|
5,4376 gram
5,8709 gram
|
5 gram
5 gram
|
12,296%
4,022%
|
Sumber : Lab.
Analisis Teknologi Hasil Pertanian Faperta Untad (2014).
Berdasarkan hasil praktikum biokimia, penentuan kadar amilosa dan
amilopektin di Laboratorium Agroindustri, yang disajikan pada tabel di atas
menunjukan bahwa kadar amilosa pada pati keladi menghasilkan 12,296 %,
sedangkan pada pati ubi kayu kadar amilosa yang dihasilkan adalah 4,022 %. Hal
ini menunjukan bahwa amilosa dalam setiap jenis pati memiliki kadar yang
berbeda-beda karena faktor dari sifat amilosa yang tidak mudah larut dalam air.
Amilosa dapat dipisahkan dari amilopektin dengan kelarutan di dalam
alkohol.Totala kadar amilopektin di dapatkan dari hasil total kadar amilosa di
kurang dengan hasil total kadar pati. Maka dari itu amilopektin sangat
bergantung pada amilosa untuk menentukan hasil kadar totalnya.
4.6 Degradasi Pati Oleh Enzim Amilase
Tabel 6. Hasil
Analisis Kimia Pengamatan Degradasi Pati Oleh Enzim Amilase :
No
|
Tabung
Reaksi
|
Larutan
Pati 1%
|
Enzim
Amilase
Saliva
|
Perubahan
Warna Yang
Semakin
Hilang
|
Hasil
|
||
Sebelum
|
Waktu
|
Sesudah
|
|||||
1.
2.
3.
4.
|
A
B
C
D
|
2 ml
2 ml
2 ml
2 ml
|
0,0 ml
0,5 ml
1,0 ml
1,5 ml
|
Biru
Biru
Biru
Biru
|
16 mnt
15 mnt
14 mnt
11 mnt
|
Tetap
Bening
Bening
Bening
|
Non-Degr
Degradasi
Degradasi
Degradasi
|
Sumber : Lab.
Analisis Teknologi Hasil Pertanian Faperta Untad (2014).
Berdasarkan hasil
praktikum Biokimia terhadap Degradasi Pati Oleh Enzim α-Amilase di Laboratorium Agroindustri yang disajikan pada
tabel di atas menunjukan bahwa, tabung reaksi yang berlabel D memiliki proses
degradasi yang sangat cepat dengan enzim yang diteteskan sebanyak 30 tetes (1,5
ml), dalam waktu selama 11 menit.
Sedangkan tabung reaksi yang berlabel B dan C proses
degradasi yang terjadi agak lambat dengan waktu yang di peroleh 14-15 menit.
Namun untuk tabung reaksi yang berlabel A sebagai kontrol atau tidak terjadi
proses degradasi pati.
BAB V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1
Kesimpulan
5.1.1
Penentuan Kadar Klorofil
1.
Pada daun muda dari berbagai jenis tanaman,
kadar klorofi total yang di hasilkan adalah lebih rendah di bandingkan dengan
kadar klorofil total pada daun tanaman yang tua.
2.
Komponen utama pada daun hijau adalah klorofil A
dan B. Dimana klorofil mempunyai sifat yang mudah larut dalam pelarut organik
polar.
3.
Dalam proses fotosintesis klorofil sangat
penting karena memiliki pigmen yang menangkap cahaya.
5.1.2 Respirasi
1.
Dari dua jenis buah memiliki laju respirasi yang
berbeda. Pada buah manga dengan hasil titrasi (26,20) ml menghasilkan laju
respirasi 17,71 mg CO2/kg/jam. Sedangkan pada buah pisang (5,39 mg
CO2/kg/jam).
2.
Tumbuhan yang telah mengalami pasca panen akan
tetap mengalami proses respirasi dengan laju yang lebih tinggi dibandingkan
saat masih tertanam dipohonya.
3.
Respirasi yang dilakukan oleh buah akan
menghasilkan panas yang mana sangat penting dalam menghitung kebutuhan
refrigerasi dan ventilasi selama penyimpanan.
5.1.3 Penentuan Kadar Pati Dalam
Tepung
1.
Pada pati keladi dengan pengenceran 20 kali
menghasilkan kadar pati (0,033%), pada gelombang 750 nm dan hasil persamaan
kurva dari pati murni. Sedangkan pada pati ubi menghasilkan (0,0324%).
2.
Dari kedua pati tersebut dapat memberikan
perbandingan bahwa dalam tepung biasanya juga mengandung serat dan mineral yang
umumnya sangat rendah.
3.
Kadar dalam tepung terdiri dari kelompok amilosa
dan amilopektin atau merupakan kadar pati total.
5.1.4 Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas
1.
Hasil titrasi dari berbagai jenis minyak yang di
amati pada minyak kelapa (16,00 ml) dan minyak sawit (12,00 ml). Sedangkan
kadar asam lemak bebas pada minyak kelapa adalah (160%) dan minyak sawit (153,6%).
2.
Dari kedua jenis minyak tersebut merupakan
sintesis pembentukan minyak yang tidak sempurna atau hasil penguraian enzim
lipase terhadap minyak yang menghasilkan asam lemak bebas dan gliserol.
3.
Asam lemak bebas pada suatu minyak tergantung
pada kandungan asam lemak yang dominan.
5.1.5
Penentuan Kadar Amilosa dan Amilopektin
1.
Hasil kadar amilosa pada pati keladi dan ubi
kayu dengan total yang di peroleh adalah (16,318%) sedangkan total kadar
amilopektin adalah (16,2526 %).
2.
Kadar Amilosa dan Amilopektin pada setiap jenis
pati yang digunakan memiliki hasil kadar
yang berbeda karena factor dari amilosa dan amilopektin memiliki sifat
yang tidak mudah larut dalam air.
3.
Amilosa dan Amilopektin umumnya banyak terdapat
pada kandungan amilum. Amilosa merupakan rantai lurus dari 1,4 alfa-glukosida, sedangkan
Amilopektin merupakan rantai lurus 1,4 alfa-glukosida dan rantai cabang 1,6
alfa-glukosida.
5.1.6 Degradasi Pati Oleh Enzim Amilase
1.
Hasil degradasi pati oleh enzim α-Amilase pada
tabung reaksi yang berlabel D proses reaksinya sangat cepat dengan waktu yang
digunakan selama 11 menit. Sedang tabung B dan C proses degradasi sangat
lambat.
2.
Semakin banyak enzim yang diberikan kepada suatu
larutan, maka semakin cepat reaksi proses degradasi yang terjadi atau larutan
yang di teteskan enzim akan semakn bening.
3.
Enzim α-Amilase merupakan suatu katalisator yang
relative mudah merangsang sel-sel hidup yang berfungsi sebagai mempercepat
reaksi pembentukan degradasi pada pati.
5.2 Saran
Sebelum praktikan berlangsung, masuk laboratorium asisten
telah menyiapkan alat-alat yang dibutuhkan pada praktikum. Kalau bisa alat-alat praktikumnya lebih di
perbanyak dan cek terlebih dahulu apakah alat ini masih bisa digunakan agar
praktikan lebih berhati-hati menghemat waktu dalam melaksanakn praktek.
Waktu untuk menjawab kuis dan pengamatan yang sedang di amati di
tambah. Setiap praktikan apabila bahan
yang sulit untuk dibawah mohon dimaklumi karena biasanya dalam pelaksanaan
praktikum semua alat dan bahan Laboratorium yang siapkan, kecuali bahan yang berupa tanaman
atau daun tanaman yang di praktekan. Semoga di tahun akan datang praktikumnya
bias jadi lebih baik lagi dan tidak terlalu mempersulitkan mahasiswa, Terima
Kasih.
DAFTAR PUSTAKA
Endang P., Deddy M., Astawan M., Fransiska R.Z., Jurnal Teknologi dan
Industri Pangan , Aktivitas Antioksidan Ekstrak Daun Suji, Vol XVII No2.
Departemen Ilmu dan Teknologi Pangan FATETA IPB, 2010, hal
(79-86).
Belitz, H.D., and
Grosch W. 2004.
Food Chemistry. 3rd
ed. New York
: SpringerVerlag Berlin
Heidebers.
Behall, K.M. and J. Hallfrisch. 2002. Plasma glucoce and insulin
reduction after consumption of bread varying in amylose content. Eur J Clin
Nutr 56 (9):913-920.
Christina, D. 2007. Karakterisasi dan Aplikasi Emulsifier Campuran
Mono dan Diasilgliserol dari
Distilat Asam Lemak
Minyak Sawit.
Dziedzic SZ dan MW Kearsley. 2009 Glucose Syrups: Science and
Technology. London: Elsevier Applied Science Publishers.
Foster-Powell, .KF., S.H.A. Holt, and J.C.B. Miller. 2002.
International Table of Glycemic Index and Glycemic Load Values: 2002. Am J Clin
Nutr 76: 5-56
Haryanto, Bambang. 2009. Potensi
dan Pemanfaatan Sagu. Yogyakarta : Kanisius
Ketaren, S. 1986. Pengantar
Teknologi Minyak Dan Lemak Pangan. Jakarta
: Universitas Indonesia. Jakarta.
Kirk Othmer, Encyclopedia of Chemical Technology, second edition, New
York, V5, 2010.
Kaufman ,P.B. Peter, 2009 Natural Product from Plants, Chlorophyll
and chlorophyl to Biosintesis, New York.
Lewis, J. 2009. Process for the Production of Tocotrienol. US Patent
6,838,104.9)
Lehninger, A.L. 2009. Principles of Biochemistry (Dasar-dasar
Biokimia Jilid 1, diterjemahkan oleh M. Thenawidjaya). Jakarta: Erlangga.
Makfoeld,Djarir.2010.Deskripsi Pengolahan Hasil
Nabati.Agritech.Yogyakarta.
Mackenzie ,C.A..2010 Experimental Organic Chemistry, Separation of
the leaf pigmen, New Jersey.
Maryati Sri. 2010. Sistem
Pencernaan Makanan. Erlangga: Jakarta.
.
Mercier, C. and P. Colonna. 2009. Starch and enzymes : Innovations in
the products, process and uses. Biofutur. Chimic. p. 55-60.
Miller JB, E. Pang dan L. Bramall. 2010. Rice: a high or low glycemic
index food? Am J Clin Nutr. 56: 1034-1036.
Munarso J. dan R. Mudjisihono, 2009. Teknologi pengolahan jagung
untuk menunjang agroindustri pedesaan, Makalah Simposium Penelitian Tanaman
Pangan III. Jakarta/Bogor, 23-25 Agustus 1993. Puslitbangtan, Bogor.
Pasaribu, N. 2009.
Minyak Buah Kelapa
Sawit. Jurusan Kimia.
Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam. Universitas
Sumatera Utara
Sudarmaji, Slamet., dkk. 2010. Analisa Bahan Makanan Dan Pertanian.
Yogyakarta : Liberty Yogykarta.
Sajilata MG, SS Rekha dan RK Puspha. 2009. Resistant starch-a review.
J. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, Vol. 5.
Septorini G. 2010. Perbedaan kadar glukosa pada onggok.
Simeh, M. A. 2009. Comparative
Advantage of The European Rapeseed Industry vs Other oils and Fats
Producers. Oil Palm Industry Economic
Journal. 4(2), 14-22. Malaysian Palm Oil Board.
Tim Biokimia. Laboratorium Pengolahan Hasil Pertanian., Fakultas
Pertanian, Universitas Tadulako., 2014.
Treybal ,R.E., Mass-Transsfer Operations, Third edition, Mc. Graw
Hill, New York, 2010.
Winarno ,F.G., Kimia Pangan dan Gizi, PT Gramedia Pustaka Utama,
Jakarta, 2009.
Weissberger ,A., Organic Solvent, Physical properties and Metods of
Purification, second edition, New York, 2010.
Winarno FG. 2010. Enzim Pangan. Jakarta: PT Gramedia.
LAMPIRAN
1.
Hasil
Perhitungan pada Pengukuran Kadar Klorofil
a)
Daun Mangga Muda
Klorofil A : 13,7 x 1,5823 – 5,76 x 0,8259 = 12,5634
mg/l
Klorofil B : 25,8 x 0,8259 – 7,7 x 1,5823 = 9,1245 mg/l
Total :
20,0 x 0,8259 – 6,1 x 1,5823 = 6,866 mg/l
b)
Daun Nangka Muda
Klorofil A :
13,7 x 2,6020 – 5,76 x 1,5409 = 26,7718 mg/l
Klorofil B :
25,8 x 1,5409 – 7,7 x 2,6020 = 19,7198 mg/l
Total :
20,0 x 1,5409 – 6,1 x 2,6020 = 14,946 mg/l
c)
Daun Pepaya Muda
Klorofil A : 13,7 x 2,8345 – 5,76 x 2,4514 = 24,7125
mg/l
Klorofil B : 25,8 x 2,4514 – 7,7 x 2,8345 = 41,4204
mg/l
Total :
20,0 x 2,4514 – 6,1 x 2,8345 = 31,737 mg/l
d)
Daun Kakao Muda
Klorofil A : 13,7 x 1,8292 – 5,76 x 0,9482 = 19,6043
mg/l
Klorofil B : 25,8 x 0,9482 – 7,7 x 1,8292 = 10,3787
mg/l
Total :
20,0 x 0,9482 – 6,1 x 1,8292 = 7,806 mg/l
e)
Daun Mangga Tua
Klorofil A : 13,7 x 2,8531 – 5,76 x 2,3062 = 22,8037
mg/l
Klorofil B : 25,8 x 2,3062 – 7,7 x 2,8531 = 37,5310
mg/l
Total :
20,0 x 2,3062 – 6,1 x 2,8531 = 28,721 mg/l
f)
Daun Nangka Tua
Klorofil A :
13,7 x 2,8923 – 5,76 x 2,8531 = 23,1906 mg/l
Klorofil B :
25,8 x 2,8531 – 7,7 x 2,8923 = 51,3392 mg/l
Total :
20,0 x 2,8531 – 6,1 x 2,8923 = 39,420 mg/l
g)
Daun Pepaya Tua
Klorofil A : 13,7 x 2,8531 – 5,76 x 2,6020 = 24,0999 mg/l
Klorofil B : 25,8 x 2,6020 – 7,7 x 2,8531 = 45,1627
mg/l
Total :
20,0 x 2,6020 – 6,1 x 2,8531 = 34,637 mg/l
h)
Daun Kakao Tua
Klorofil A : 13,7 x 2,5330 – 5,76 x 1,4897 = 26,1214
mg/l
Klorofil B : 25,8 x 1,4897 – 7,7 x 2,5330 = 18,9301
mg/l
Total : 20,0
x 1,4897 – 6,1 x 2,5330 = 14,343 mg/l
2.
Hasil
Perhitungan pada Laju Respirasi
a)
Buah Mangga
Laju Respirasi = (34,25 – 26,2) x 0,05 x
44 ml
= 8,05 x 0,05 x 44 ml
= 17,71 mg CO2/kg/jam
b)
Buah Pisang
Laju Respirasi =
(34,25 – 31,80) x 0,05 x 44 ml
= 2,45 x 0,05 x 44 ml
= 5,39 mg CO2/kg/jam
3.
Hasil
Perhitungan pada Penentuan Kadar Pati Dalam Tepung
a)
Kadar
Pati Keladi
Persamaan
Kurava = 0,003 x 0,1741 + 0,016 = 0,0165 mg/ml
Pengenceran = 20 x 0,0165 = 0,33 mg/ml
Kadar Pati (%) = 0,33 / 1000 x 100 % = 0,033 %
b)
Kadar Pati Ubi
Persamaan
Kurava =
0,003 x 0,0723 + 0,016 = 0,0162 mg/ml
Pengenceran = 20 x 0,0162 = 0,324
mg/ml
Kadar Pati (%) = 0,324 / 1000 x 100 % = 0,0324 %
Kurva Persamaan
4.
Hasil
Perhitungan pada Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas
a)
Minyak Sawit (Asam Palmitat)
12,00
x 256 x 0,1 ml
Kadar Asam Lemak
Bebas = x 100 %
2
gram
= 153,6
ml/g
b)
Minyak Kelapa (Asam Laurat)
16,00 x 200 x 0,1 ml
Kadar Asam Lemak Bebas = x 100 %
2
gram
= 160
ml/g
Ket.
Hasil Titrasi Minyak Sawit =
12,00 ml
Hasil Titrasi MInyak Kelapa =
16,00 ml
BM Minyak Sawit =
256
BM Minyak Kelapa =
200
5.
Hasil
Perhitungan pada Penentuan Kadar Amilosa dan Amilopektin
a)
Kadar Amilosa Pati Keladi
(1,0524 + 5) – 5,4376 ml
Kadar Amilosa = x 100
%
5 gram
= 12,296 %
b)
Kadar Amilosa Pati Ubi Kayu
(1,0720 + 5) – 5,8709 ml
Kadar Amilosa = x 100 %
5 gram
=
4,022 %
BIODATA PENYUSUN KELOMPOK III
Nama : Ahmad
Stambuk :
E 281 13 169
Ruang / Kelas :
03 / AGT -03
Semester / TA :
II /2014
Fak. / Prodi :
Pertanian /Agroteknologi
E-mail :
ahmadagro@yahoo.com
Alamat :
Jl. Martadinata. Tondo (Palu Timur)
No. HP :
085398775266
Nama : Moh. Ridwan
Stambuk :
E 281 13 163
Ruang / Kelas :
03 / AGT -03
Semester / TA :
II /2014
Fak. / Prodi :
Pertanian /Agroteknologi
E-mail :
erliesputramorowali@yahoo.com
Alamat :
Jl. Pesona Teluk. Tondo (Palu Timur)
No. HP : 085240307877
Nama : Zulfan
Stambuk :
E 281 13 152
Ruang / Kelas :
03 / AGT -03
Semester / TA :
II /2014
Fak. / Prodi :
Pertanian /Agroteknologi
E-mail :
zulfanzhul@yahoo.com
Alamat :
Jl. Martadinata. Tondo (Palu Timur)
No. HP : 085394347967
Nama : Rafiat.M Aliabu
Stambuk :
E 281 13 142
Ruang / Kelas :
03 / AGT -03
Semester / TA :
II /2014
Fak. / Prodi :
Pertanian /Agroteknologi
E-mail :
rafiatsagitariuss@yahoo.com
Alamat :
Jl. Martadinata. Tondo (Palu Timur)
No. HP : 087844438194
Nama : Sarna
Stambuk :
E 281 13 147
Ruang / Kelas :
03 / AGT -03
Semester / TA :
II /2014
Fak. / Prodi :
Pertanian /Agroteknologi
E-mail :
sarnacantik@ymail.com
Alamat :
Jl. Martadinata. Tondo (Palu Timur)
No. HP : 081343716121
Nama : Esna
Stambuk :
E 281 13 179
Ruang / Kelas :
03 / AGT -03
Semester / TA :
II /2014
Fak. / Prodi :
Pertanian /Agroteknologi
E-mail :
esnatadiu@yhoo.com
Alamat :
Jl. Martadinata. Tondo (Palu Timur)
No.
HP : 082393759611
Tidak ada komentar:
Posting Komentar